Vkacíny a Oćkování
AKTUALITA: Sledujte týdenní aktuality ze světa o možných zdravotních rizikových situacích.
PRŮVODCE
OČKOVÁNÍM
STŘEDISKA
OČKOVÁNÍ
CENY
VAKCÍN
ZDRAVOTNÍ
POJIŠŤOVNY
EXOTICKÉ
INFEKCE
OČKOVÁNÍ
do CIZINY
CESTOVNÍ
MEDICÍNA
Přečtěte si důležité informace
AKTUALITY
ODBORNÉ PUBLIKACE
PRINCIPY OČKOVÁNÍ
PRAVIDELNÉ OČKOVÁNÍ
DOPORUČENÉ OČKOVÁNÍ
OČKOVÁNÍ do CIZINY
OČKOVÁNÍ BUDOUCNOSTI
ZÁKONNÉ NORMY
PORADNA
NAPIŠTE NÁM
 
AKTUALITY ze SVĚTA
 
 
TOPlist
OČKOVÁNÍ proti tuberkulóze (TBC)
Určeno pro odbornou lékařskou veřejnost
AKTUALIZACE ze dne: 7.1.2008
OBSAH  
Epidemiologie   Účinnost očkování
Klinický obraz   Kontraindikace
Očkovací látky   Upozornění
Složení očkovacích látek   Interakce
Indikace   Těhotenství a laktace
Legislativa   Nežádoucí účinky
Dávkování a způsob podání   Doba použitelnosti a skladování
Promeškaný termín očkování    
Epidemiologie - ČR
ZPĚT

Tuberkulóza je infekční onemocnění, vyvolané zpravidla zvláštní bakterií Mycobacterium tuberculosis. Zdrojem onemocnění je především člověk, vzácněji i zvířata (domácí skot). Infekce se šíří kapénkovou cestou nebo požitím tepelně nezpracovaného mléka. Po vdechnutí bacilů dochází k jejich množení v plicích a krevní cestou jsou po určité době zanášeny do různých orgánů. Proto mohou být tuberkulózou postiženy i jiné orgány (lymfatické uzliny, střevo, ledviny, nadledviny, mozkové pleny, osrdečník, kosti a jiné), i když plicní forma tuberkulózy je nejběžnější.
Jen v roce 1990 bylo na celém světě zaznamenáno asi 7,5 miliónu nových případů onemocnění tuberkulózou a zhruba 3 milióny lidí na tuberkulózu zemřelo. Odborníci Světové zdravotnické organizace odhadují, že během let 1990 až 1999 bude zhruba 90 miliónů nemocných tuberkulózou a téměř 30 miliónů na ni zemře. Celosvětový vzrůst počtu tuberkulózou postižených osob v devadesátých letech tohoto století je přičítán vysokému a neustále rostoucímu počtu HIV pozitivních osob, které mají postižený imunitní systém a mohou být velmi snadno nakaženy tuberkulózou. Takto může docházet k vytváření lidského zdroje nákazy. Epidemiologická situace je však v různých zemích odlišná. V rozvojových zemích patří toto onemocnění k hlavním příčinám úmrtí. Ze zemí střední a východní Evropy patří Česká republika mezi země s nejnižším ročním výskytem tuberkulózy (zhruba 20 případů onemocnění na 100.000 obyvatel) ve srovnání s průměrným ročním výskytem v Západní Evropě (25 případů na 100.000 obyvatel). Důkazem nutnosti a prospěšnosti očkování proti tuberkulóze byla situace, ke které došlo po zastavení celoplošného regionálního očkování ve Středočeském a Východočeském kraji v roce 1986 a v Jihočeském kraji od roku 1989, kde se provádělo očkování pouze novorozenců rizikových rodin a dětí na přání rodičů. V následujících letech byl zaznamenán vzestup počtu plicních forem tuberkulózy u neočkovaných dětí. V roce 1993 došlo dokonce k úmrtí ročního neočkovaného dítěte na generalizovanou tuberkulózu. Od ledna 1994 bylo v těchto krajích opět zahájeno povinné celoplošné očkování všech nově narozených dětí.


Výskyt (Incidence) absolutního počtu případů této nákazy v České republice (od 1960 do 2006)
Mapa: Proočkovanost proti tuberkulóze po narození v roce 2005
(Zdroj: SZO/Unicef odhad proočkovanosti v letech 1980-2005, Srpen 2006)
Mapa: Celosvětový výskyt tuberkulózy 2007

Klinický obraz
ZPĚT

Rozsev bacilů do různých orgánů s sebou zpravidla nepřináší žádné obtíže. Ty mohou vypuknout až po určité době. V některých případech může akutní tuberkulóza propuknout i po letech od získání infekce. Příznaky jsou většinou nepříliš výrazné, nemocní trpí únavou, hodně se potí (hlavně v noci), mají zvýšenou teplotu a ubývají na váze. Plicní formy, které jsou nejčastější a také nejvíc nebezpečné pro okolí (pacient bacily vykašlává) se projevují vleklým kašlem. K nejnebezpečnějším formám tuberkulózy patří zánět mozkových blan a postižení více orgánů současně (tzv. generalizovaná forma). V těchto případech je úspěch léčby nejistý a nemocný je ohrožen smrtí nebo těžkými, zpravidla neurologickými následky. Léčba tuberkulózy trvá několik měsíců. V poslední době se objevují tuberkulózní bacily, které nereagují na antibiotickou léčbu, což je skutečnost, která celou situaci kolem léčby tuberkulózy značně komplikuje.


Očkovací látky
ZPĚT
Název komerční vakcíny
1)
2)
3)
4)
5)
Poznámka
BCG VACCINE SSI INJ. SIC.
SPC
PI
BCG
30.7.2003 (SPC); 16.10.2000(PI)
R
BCG-VACCINE 500 BEHRING
SPC
PI
BCG
26.11.1999
(SPC+PI)
X
není k dispozici
BCG-VACCINE BEHRING
SPC
PI
BCG
26.11.1999
(SPC+PI)
X
není k dispozici
1) Souhrn údajů o přípravku (SPC)
2) Příbalová informace (PI)
3) Zkratka
4) Datum poslední reveze textu
5) X ... není již v ČR registrována, R ... vakcína registrována v ČR nebo EU; I ... individuální dovoz (v ČR není registrována); S ... specifický léčebný program (v ČR není registrována)

Složení očkovacích látek
ZPĚT

Očkovací látku (BCG = avirulentní Bacil Calmette Guerin) tvoří lyofilizát bakteriálních zárodků Mycobacteria bovis, které se získávají pomnožením vhodného atenuovaného vakcinačního kmene na umělém kultivačním médiu.

Vůči všem mykobakteriálním onemocněním existuje pouze jedna jediná vakcína, založená na Mycobacteria bovis. V roce 1908 provedl Calmette a Guerin v Pasteurově Institutu sérii 230 pasáží virulentní mykobakterie bovis [1]. Původní virulentní kmen se nechal růst po dobu 13 let na vařených bramborových plátech v hovězí žluči s přídavkem glycerolu. Výsledná kultura byla stabilní vůči reverzi virulence a zachovávala si omezenou invazivnost. První lidské očkování s tímto atenuovaným kmenem, označovaný jako Camette-Guerin (BCG), bylo provedeno v roce 1921 v Paříži [2]. V roce 1928 byla tato vakcína přijata Ligou národů a od té doby se používá pro plošné očkování. V prevenci tuberkulózy sehrála BCG imunizace jednu z nejvýznamnějších rolí. Používá se v pravidelném očkování v 64 zemí a doporučuje se v dalších 118 zemích [3].

V řadě výrobních laboratoří byly připraveny odvozené subkmeny z původního vakcinačního BCG kmene. Vznikly nejčastěji dodatečnými pasážováním na kulturách tak, aby ztratily zbytkovou invazivnost a zachovaly si původní účinnost. Všechny dosud používané výrobní kmeny jsou registrovány a schváleny SZO. V současnosti se nejvíce používají 4 kmeny: Pasteur-1173 P2, Tokyo-172, Copenhagen-1331 a Glaxo-1077.

Koncentrace v jedné dávce vakcíny (0,1 ml nebo 0,05 ml - v závislosti na typu komerční vakcíny) je tvořena zhruba 100.000 až 400.000 VBC ("viable bacterial count" = počet živých bakteriálních zárodků). Do roku 1998 byla i u nás používána ještě koncentrovanější vakcína, která v jedné dávce obsahovala 300.000 až 600.000 VBC. Výrobce tuto vakcínu přestal dodávat, přestože je vhodnější pro očkování dětí starších 1 roku nebo dospělých osob a přestože se běžně používá pro očkování v řadě zemích světa.
Do roku 1996 se používala vakcína výrobce Behring, která se u dětí mladších 1 roku podávala v dávce 0,1 ml. Následně došlo k úpravě a dávka se snížila na polovinu. Kromě této vakcíny byla v té době nově registrována další vakcína o stejného výrobce označená jako "500", která se opět podávala o velikosti 0,1 ml (neboť tato vakcína obsahovala nižší koncentraci VBC). Situace se změnila v době, kdy Behring přestal vakcínu vyrábět a nahradil ji za originální vakcínu z Dánska, BCG vaccine SSI, která se dětem mladším 1 roku znovu podává v dávce 0,05 ml.

Změna velikosti dávky nevedla ke změně síly dávky (tj. podané koncentrace živých bakteriálních zárodků): dnešní vakcína SSI: 1 ml obsahuje 2.000.000-8.000.000 VBC, což v jedné dávce 0,05 ml představuje 100.000 - 400.000 VBC - "viable bacterial count" = počet živých bakteriálních zárodků.

Vakcinační BCG kmen
Počet živých bacilů v jedné vakcinační dávce
Pasteur 1173 P2
37,500-500,000
Danish 1331
150,000-300,000
Glaxo 1077
200,000-1,000,000
Tokyo 172
3,000,000
Montreal
200,000-3,200,000

Literatura
1. Calmette A, Boquet A, Negre L. Contribution a l'etude du bacille tuberculeux bilié. Arm Inst Pasteur 1921;35:561-570.
2. Weill-Hallé B, Turpin R. Premiers essais de vaccination antituberculeuse de l'enfant par le bacille Calmette-Guérin (BCG). Bull Mem Soc Med Hop Paris 1925;49:1589.
3. Ildirim I, Sapan N, Cavucsoglu B. Comparison of BCG vaccination at birth and a third month of life. Arch Dis Child 1992;67:80-82.


Indikace
ZPĚT

BCG vakcína se používá pro aktivní imunizaci dětí ve věku od 4 dní do 6 týdnů proti TBC a pro imunizaci všech osob, které jsou tuberkulín-negativní a mohou být vystaveny zvýšenému výskytu této nákazy.


Legislativa
ZPĚT

VYHLÁŠKA (č. 537/2006) ze dne 29. listopadu 2006
o očkování proti infekčním nemocem

§ 3
Pravidelné očkování proti tuberkulóze

(1) Základní očkování proti tuberkulóze se provede nejdříve čtvrtý den a nejpozději do konce šestého týdne po narození dítěte. Po třech až čtyřech měsících po tomto očkování se provede přešetření místa vpichu a regionálních uzlin. Pokud se nezjistí žádná lokální reakce, provede se přeočkování zpravidla po skončení základního očkování prováděného v rámci pravidelného očkování dětí, a to v případě negativního tuberkulinového testu.

(2) Pokud nelze základní očkování provést podle odstavce 1, provede se až po skončení základního očkování prováděného v rámci pravidelného očkování dětí; to neplatí, jde-li o novorozence patřící do dispenzární skupiny kontaktů s aktivní tuberkulózou, kteří se proti tuberkulóze očkují přednostně před ostatním očkováním. Očkují se jen děti s negativním tuberkulinovým testem.

(3) Další přeočkování se provede v době od dovršení jedenáctého do dovršení dvanáctého roku věku dítěte po předchozím provedení tuberkulinového testu, a to jen u dětí s negativním tuberkulinovým testem.


Dávkování a způsob podání
ZPĚT

Dávkování:
Jedna dávka BCG vakcíny má objem 0,1 ml pro osoby starší 1 roku a 0,05 ml pro děti mladší 1 roku (velikost dávky se může měnit v závislosti na typu komerční vakcíny; obecně platí koncentrace VBC v jedné dávce je 100.000 - 400.000
pro děti maldší 1 roku a 200.000 - 800.000 pro osoby starší 1 roku). Primární imunizace je prováděna podáním jedné vakcinační dávkou nejdříve 4. den po narození až do 6 týdnů. Všichni novorozenci se očkují bez provádění tuberkulínové zkoušky.

Boosterující (posilující) imunizace se provádí tehdy, byl-li zjištěn negativní výsledek tuberkulínové zkoušky. Tato zkouška se povinn
ě provádí v 11. roce u těch dětí, u nichž nebyla prokazatelně vytvořena jizvička po očkování v novorozeneckém věku. Tuberkulínové zkoušky se rovněž provádějí u těch osob (zejména mladších 30 let), u nichž existuje reálné riziko expozice tuberkulózy, např. v rodinném prostředí. Podle situace se tato zkouška může opakovat každoročně.
Intradermální reakce tuberkulínové zkoušky se může objevit nejdříve po 6 týdnech po očkování.

Od roku 1986 ve Středočeském a Východočeském kraji a od roku 1989 v Jihočeském kraji se očkovali pouze novorozenci rizikových rodin a děti rodičů, kteří si očkování vyžádali. Vzhledem k zvýšenému výskytu TBC u neočkovaných dětí v těchto regionech bylo toto očkování od roku 1994 opět zavedeno jako povinné pro všechny novorozence.

Způsob podání:
Vakcína se před použitím rozpustí ve vhodném rozpouštědle, které tvoří fyziologický roztok nebo jiný výrobcem dodávaný roztok. Po dokonalém rozpuštění vznikne čirý bezbarvý roztok.
Vakcinační dávka se podává intradermálně do horní části levé paže nebo do levého stehna, což vede k aktivaci okolních mízních uzlin. Bylo-li očkování provedeno správně, objeví se bledý pupen.
Byla-li injekční jehla zavedena příliš hluboko, je nutné aplikaci přerušit a podat vakcínu na jiné místo. Je-li očkování provedeno nesprávně, nebo byla-li podána vyšší dávka vakcíny, může se objevit ulcerace a/nebo lymfadenitida.
Vakcína se nesmí aplikovat intravaskulárně a intramuskulárně.
Živé atenuované mykobakterie se snadno inaktivují alkoholem a detergenty, a proto je nutné se vyhnout možnému styku vakcíny s těmito látkami. Před očkováním se musí dezinfekční činidla z kůže v místě vpichu odstranit.

Tuberkulínová zkouška:
Po BCG očkování se může vytvořit v místě vpichu tvrdý červený pupence, zhruba za 3-4 týdny a přetrvává po dobu 2-3 týdnů. Jeho maximální velikost bývá 6-12 mm, která přetrvává kolem 3-6 dní. Po zhojení pupence vznikne jizvička (zhruba po 3-6 měsících po očkování). "Úspěšnost" očkování lze ověřit také tuberkulínovou zkouškou, která se provede nejdříve po 3 měsících po očkování. Je-li tato zkouška negativní, pak se BCG očkování opakuje v den odečtu tuberkulínové zkoušky.
Podle metodických pokynů a doporučení výrobce vakcíny, BCG vaccine SSI, se tuberkulínová zkouška odečítá po 2-3 dnech po jejím provedení. Metodický pokyn umožňuje další revakcinaci proti TBC v případě, že tuberkulínová zkouška byla negativní, provést ve stejný den jako je proveden odečet této kožní zkoušky, tj. 3. den po tuberkulínové zkoušce. Tento postup není vysloveně ani doporučen ani zakázán výrobcem této tuberkulínové zkoušky a je dán výlučně metodickým pokynem, který spíše upřednostňuje technickou stránku provádění.
Dalším zvláštním ustanovením metodického pokynu je platnost tuberkulínové zkoušky, která je dána jen 14 dní. Je-li tuberkulínový test negativní a BCG revakcinace není provedena do 14 dní, pak se musí znovu provést tuberkulínový test. Odůvodněním je prý odlišný výsledek dvou tuberkulínových testů provedených v intervalech delších než 14 dní (to však není nic výjimečného, neboť kožní tuberkulínový test je empirický testem, který není vždy dokonale spolehlivý a nemusí vždy bezprostředně odrážet kvalitu imunity vůči TBC získané po očkování).


Promeškaný termín očkování
ZPĚT

Dojde-li k promeškání termínu BCG imunizace, provede se imuniace kdykoli jindy, umožní-li to zdravotní stav a další okolnosti (např. jiné očkování).


Účinnost očkování
ZPĚT

A) Protektivní meze
Tvorba imunitní odpovědi po BCG vakcinaci má poněkud odlišný mechanismus než všechny ostatní očkovací látky. Princip tohoto očkování spočívá podobně jako u ostatních živých vakcín v simulaci infekčního onemocnění s dávkou nižší než je infekční a za použití takového kmene, který nevykazuje patogenitu.
Po inokulaci vakcinačního kmene mykobakteriáních zárodků dochází z větší části k jejich usmrcení. Pouze zhruba 10% zárodků přežívá [1] a dále se pomnožuje v místě vpichu. Chemotaxí se přitahují k inaktivním monocytům a lymfocytům v krevním řečišti někdy za vzniku primárních tuberkulózních uzlíků [2]. Po několika málo týdnech tuberkulózní zárodky přežívají, rostou a pomnožují se v symbióze s inaktivními makrofágy. Přitom začíná období tzv. opožděné hypersenzitivity a vzniku buněčné imunity, které se klinicky projevují vznikem zarudlého pupence za 3-4 týdny po očkování s perzistencí 2-3 týdny.
Imunitní odpověď po BCG očkování je zajištěna jak opožděnou hypersenzitivitou, která usmrtí makrofágy inaktivované pohlcenými tuberkulózními zárodky, tak buněčnou imunitou, která zvyšuje schopnost makrofágů usmrtit tyto zárodky pohlcením prostřednictvím cytokínů (lymfokínů) vytvářenými či uvolňovanými T-helper buňkami [3-5]. Dále se z největší pravděpodobností ukazuje, že protektivní účinnost očkování souvisí i s cytolytickou aktivitou, která usnadňuje destrukci imunologicky vyčerpané, bacily naplněné buňky [5,6]. Navíc bylo dokázáno, že rovněž apoptóza umožňuje usmrcení intracelulárních tuberkulózních bacilů [7].
Důležitým hlediskem vysvětlení, proč některé reinfekce mykobakteriemi nevyvolají protekci makrofágovou nebo cytolytickou aktivací [8], je skutečnost, že T-helper buňky podstupují dva odlišné způsoby dozrávání, tj. vznikají Th1 a Th2 klony. Princip dozrávání T-helper buněk je podobný jako u předešlých vakcín, tzn. po vazbě s imunogenem dochází k jejich proliferaci.
Oba typy buněk se od sebe navzájem liší cytokíny, které produkují: Th1 produkuje interleukin-2 a gama-interferon, zatímco Th2 indukuje interleukiny (IL-4, IL-6 a IL-10). Cytokíny produkované jedním typem buněk mohou inhibovat produkci nebo aktivitu cytokínů druhého typu. Čistá Th1 buněčná odpověď zajišťuje účinnou ochranu očkované osoby, zatímco kombinovaná Th1 a Th2 nebo jen Th2 odpověď nevede k úspěšnému výsledku očkování [9-12]. Preference tvorby Th1 buněčné odpovědi může být dána věkem očkované osoby (doporučuje se očkovat mladší děti) nebo genetickou vybaveností populace (vysvětlení proč u některé populace toto očkování vykazuje jen velmi malou účinnost).

Vztah mezi postvakcinační opožděnou hypersenzitivitou a protektivní imunitou je sporný, neboť žádný jasný vztah nebyl nikdy stanoven. Ani přítomnost ani postvakcinační velikost tuberkulínového kožního testu spolehlivě nepředpovídá stupeň protekce vyvolané po očkování s BCG [14,15]. Studie na zvířatech přinesly tyto závěry:
1) žádný přímý vztah mezi velikostí kožního reakce a stupněm získané rezistence nebyl zjištěn;
2) některá očkovaná zvířata, jejichž kožní testy byly negativní byla chráněna;
3) tuberkulínové testování posílilo ubývající tuberkulínovou reakci, ale neposílil ubývající protektivní imunitní odpověď.


Existuje ("two-pathway" ) teorie o "dvou cestách", která je založena na tom, že po BCG očkování může dojít ke spuštění buď protektivní (Listerův typ) nebo antagonistické (tubrkulínový nebo Kochův typ) reakce. Obě tyto reakce jsou kompetitivní [16-19].

Klinické zkoušky potvrdily, že mykobakteriání nákazy s jinou mykobakterií než je M.tuberculosis, tj. včetně očkování s BCG, může vyvolat nějakou protekci vůči tuberkulóze. "Nákaza" vyvolaná uměle, tj. imunizací s BCG vakcínou vede k šíření BCG z inokulačního místa přes lymfatický systém k lokálním lymfatickým uzlinám a vytváří imunitu ekvivalentní imunitě vzniklé po přirozené nákaze s virulentním bacilem. A podobně jako je tomu u přirozené tuberkulózy, rezistence je zprostředkována buňkami a nejvíce souvisí s aktivovanými makrofágy. BCG indukovaná imunita se vyvíjí zhruba 6 týdnů po imunizaci.
Experimentální studie ukázaly, že mechanismus účinku BCG očkování spočívá v redukci hematogenního šíření bacilů z místa primární infekce [20] zprostředkované paměťovými T lymfocyty vyvolané po první expozici BCG. Nebyl dán žádný důkaz o tom, že BCG redukuje riziko infekčních bacilů tuberkulózy, ale bylo prokázáno, že předchází formám tuberkulózy závisející na hematogenním šíření bacilu [21]. Tato inhibice snižuje riziko bezprostředního onemocnění.
Díky tomu, že toto očkování snižuje riziko bezprostředního onemocnění, ale nesnižuje riziko nákazy, existuje rozdíl v protektivním účinku BCG vakcíny podle typu nákazy tuberkulózou. Klinická studie u novorozenců [22] vykázala široký rozsah protektivní účinnosti (což by mohl být základ měření protekce vůči tuberkulóze, vyvolané BCG imunizací).

Forma TBC
Protektivní účinnost (%):
Primární komplex v plicním laloku:
20%
Primární komplex s lokálním rozsahem:
32%
Lymfadenitida:
32%
Tuberkulóza kostí:
39%
Tuberkulózní meningitida:
52%
Diseminovaná tuberkulóza:
80%

Obecně se opožděná hypersenzitivita měří ne injekčně s BCG vakcínou, ale za použití purifikovaného proteinového derivátu (PPD) odvozeného z bacilu tuberkulózy. Tzv. tuberkulín je odvozen z přípravku M.tuberculosis. Naopak PPD může být purifikovaný protein z tuberkulínu nebo odvozený z jiné mykobakterie, např. z M.bovis. Detekce tuberkulínové reakce s PPD nemusí nutně korelovat s přítomnou imunitní odpovědí vůči BCG nebo M.tuberculosis. Obecně se používá pro kvantifikaci opožděné reakce hypersenzitivity bývá Mantoux test. Testy se liší koncentrací tuberkulínu, metodou aplikace a metodu odečtu výsledku testu. Mantoux test obsahuje v 0,1 ml 5 TU (tuberkulínových jednotek) PPD roztoku a aplikuje se intradermálně na volární povrch horní třetiny předloktí. Výsledky se zpravidla odečítají 48-72 hodin po provedení testu, přitom minimální plocha zatvrdliny pro určení pozitivní zkoušky bývá v průměru 5 mm.

Heaf test používá kapku neředěného (100.000 IU/ml) PPD, která se skleněnou tyčinkou natře na předloktí. Potom se pomocí aparátku se 6 jehlami injektuje zhruba 50 IU do epidermis. Výsledky se odečítají 5-7 dní později a zaznamenává se stupeň 1-4 v závislosti na vzhledu papulí v místech vpichu. Stupeň 2-4 je interpretován jako pozitivní. tento test neposkytuje kvantitativní výsledky.

Mantoux i Haef test ne zcela korelují s opožděnou hypersenzitivitou vyvolanou infekčním organismem.
Účinnost BCG očkování je tradičně stanovována měřením tuberkulínové senzitivity vyvolané vakcínou. Test je považován za dobrý pro kontrolu kvality různých šarží stejné vakcíny a pro zhodnocení techniky očkování. Tyto testy jsou však nevhodné pro srovnání vakcín jednotlivých výrobců.

Na základě výsledků jedné klinické studie [23] u novorozenců v Indii se ukazuje, že tuberkulínová reakce v závislosti na velikosti aplikované dávky nekoreluje s tvorbou jizvy po očkování. To může pravděpodobně souviset s tím, že jizva po očkování odráží celkovou masu bacilů (živých i mrtvých zárodků), zatímco tuberkulínová reakce měří jen přežívající bacili. Mimo jiné bylo zjištěno [24], že poloviční dávka vakcíny snižuje jak tuberkulínovou reakci tak jizvu o zhruba 1 mm, ale použití BCG vakcíny obsahující relativně velké množství mrtvých bacilů zmenšuje velikost jizvy a méně snižuje tuberkulínovou senzitivitu. Imunogenní schopnost opožděné hypersenzitivní reakce je nižší pro mrtvé bacily nebo deriváty než pro živé BCG bacily [25].

I když je opožděná hypersenzitivita postulována tak, že je zprostředkována stejným mechanismem jako protektivní účinek očkováním, nejsou obě vlastnosti ve vzájemné shodě.

Revidovaná data z klinických studií vedou k závěrům, že nedostatek korelace je zřejmý, což podtrhuje zbytečnost předpovídat účinnost (např. protektivní účinnost) z konverzních poměrů (jako např. na základě stanovené opožděné hypersenzitivity) [26]. Ukázalo se, že vysoce účinná vakcína proti tuberkulóze zajistí stupeň ochrany očkovanému jedinci nezávisle na stupni tuberkulínové kožní zkoušky senzitivity vyvolané po očkování [27] a není tedy žádný vztah mezi postvakcinační tuberkulínovou konverzí a protektivní účinností vyvolanou BCG u člověka [28].
Kromě toho neexistuje ani paralelní kinetika postupné ztráty tuberkulínové senzitivity a protektivní imunity [29-31].

Nejlepší metodou určení protektivní účinnosti vakcíny je prospektivní, randomizovaní, dvojitě zaslepená, placebem kontrolovaná. Tyto studie jsou obtížné a finančně nákladné a jen výjimečně se provádí.


Použití různých BCG vakcín vede k různým výsledkům tuberkulínového testu. Dokonce tuberkulínovým testem nelze rozlišit, zda se jedná o reakci po očkování nebo po onemocnění TBC. Výsledky tuberkulínového testu se pohybují v rozmezí 0-90% [38-44] a jsou závislé na:
1) použitém kmeni a aplikované dávce BCG vakcíny [41,45]
2) způsobu podání BCG vakcíny [40,43-47]
3) věku očkovance [40,43-47]
4) socioekonomický stav očkovance
5) počtu let od poslední BCG vakcinace [40,43,47]
6) četnosti provádění tuberkulínového testu [48]
7) případně častém opakování BCG vakcinaci [49], což ale nebylo vždy potvrzeno [50].


Některé studie ukázaly určitou podobnost tuberkulínové reakce mezi sourozenci očkovanými BCG vakcínou, která se dokonce zvyšuje u dvojčat [5152]. Během několika let tuberkulínová reaktivita rychle klesá. Bylo dokonce zjištěno, že u 50% novorozenců očkovaných BCG po narození byla tuberkulínová reakce po 6 měsících negativní a u téměř všech novorozenců po 1 roce [40] nebo jen u velmi malého procenta (18%) dětí [53]. U dětí ve věku 11 let byl pozitivní kožní test jen u 4,9% dětí očkovaných po narození a u 12,5% dětí očkovaných v pozdějším věku [39]. Podobné výsledky byly zjištěny i u mladých dospělých osob ve věku 23 let, kdy jen 10,3% očkovaných v po narození mělo pozitivní tuberkulínový test ve srovnání s 25,5% očkovaných v pozdějším dětském věku.

Opakování tuberkulínového testu v krátké době (kratší než 1 rok) by se nemělo provádět, neboť tím může dojít ke konverzi z negativního na pozitivní výsledek.

B) Imunogenita a klinická účinnost
Prospektivní, randomizované, dvojitě zaslepené a placebem kontrolované studie [20, 32-34], ukázaly, že moderní BCG vakcíny dosahují účinnosti v rozmezí 60-90% v protekci diseminované tuberkulózy nebo meningitidy u malých dětí, ale o něco nižší účinnosti v ochraně před ostatními formami primární tuberkulózy. Dále tyto studie vedly k závěru, že neexistuje žádný důkaz o tom, že některá z komerčních BCG vakcín vykazovaly významně lepší protektivní výsledky.
I přes obtížnost hodnocení účinnosti BCG vakcín, bylo zjištěno, že účinnost těchto vakcín je nejvyšší u nejmenších dětí a s věkem účinnost tohoto očkování klesá [29,31]. Po ukončení celoplošné BCG imunizace novorozenců ve Švédsku se incidence TBC onemocnění u dětí zvýšila až 6krát [35].
Vzhledem k tomu, že BCG očkování chrání zejména před hematogenním šíření infekce, lze předpokládat, že největší protekce bude vůči miliární tuberkulóze a tuberkulózní meningitidě narozdíl od plicní tuberkulózy [36].
Existuje jednoznačně zřetelná heterogenita mezi různými izoláty M.tuberculosis [78], avšak dopad antigenních odlišností není vysvětlen. Jedním z možných důvodů selhání BCG vakcíny pozorované v klinické zkoušce na jihu Indie [31,79] byla skutečnost, že zde existoval vysoký počet onemocnění vyvolané antigenními varianty. Přesto BCG vyvolává ochranný účinek nejen vůči tuberkulóze ale i lepře (způsobené M.leprae). Některé epidemiologické údaje potvrzují, že BCG imunizace chrání děti před lymfadnitidou způsobenou netuberkulózními mykobaketriemi, zejména M.avium [80,81].
Poslední údaje potvrzují rovněž vysokou antigenní variaci mezi BCG kmeny. I přes tuto různorodost BCG vakcín několik klinických studií neprokázalo statisticky významné rozdíly v protektivní účinnosti jednotlivých vakcinačních kmenů [34].

Vliv vakcinačního kmene a velikost podané dávky
Původní kmen M.bovis používaný pro přípravu BCG vakcíny byl uchován v Pasteurově Institutu. Jako master seed byl rozeslán do dalších několika laboratoří po světě a každá laboratoř si z něj připravila vlastní BCG vakcínu dalším pasážováním. Je zřejmé, že použití různých subkultur na různých kultivačních médiích při různých podmínkách kultivace vedla k vytvoření řady dceřiných BCG kmenů, které se vzájemně od sebe liší svou morfologií, růstovými schopnostmi, biochemickou aktivitou, schopností vyvolat opožděnou hypersezitivitu a virulencí. Vzhledem k odlišným vlastnostem těchto vakcinačních kmenů byla snaha rozdělit je alespoň do určitých skupin. Skupina 1 je zastoupena kmeny (brazilský, japonský, švédský a ruský), které vylučují antigeny, methoxymykoláty a dvě kopie vložených sekvencí 6110 [58]. Skupinu 2 reprezentuj kmeny (dakarský, dánský, holandský, britský, pasteurský), které nevylučují antigeny nebo methoxymykoláty a mají jen jednu kopii vložené sekvence 6110.
Laboratorní studie a pozorování u člověka ukázaly, že některé BCG kmeny mohou být označené jako "silné" (Pasteur 1173 P2, Dánský 1331) a jiné jako "slabé" (Glaxo 1077 a Tokyo 172). Silné kmeny jsou více imunogenní na různých zvířecích modelech, vyvolávají vyšší stupeň kožní hypersenzitivity a lepší protekci vůči TBC než "slabé" kmeny [54]. Také další měření imunity jako např. tvorba lokálních granulomů a reziduální virulence jsou častěji pozorované po očkování se silnými kmeny [56,55]. Na morčatech dokonce tyto kmeny vyvolávají lepší protekci vůči TBC.
Je však těžké dokázat, že různé kmeny BCG vyvolávají u člověka různou ochranu [54,55,57-59,77]. Výsledky případových studií u očkovaných dětí v exponovaných situacích naznačují, že může existovat odlišná protekce mezi hlavními používanými vakcinačními BCG kmeny. SZO provedla odhad bezprostřední protekce vůči těžkým a lehčím formám tuberkulózy u očkovaných dětí [60,34].

Vakcinační kmen
Těžká forma
Lehčí forma
Glaxo 1077
60-80%
24-50%
Tokyo 172
60-95%
39-53%
Pasteur 1173 P2
70-75%

Slabé a silné BCG kmeny se rovněž liší i ve své tolerabilitě [61]. Silné kmeny častěji vyvolávají lymfadenitidu a osteitidu, zejména u novorozenců [62-65]. Snížení vakcinační dávky silného kmene redukuje incidenci lymfadenitidy a předpokládá se, že snížená dávka dosahuje stejnou účinnost jako původní velikost dávky.
Obecně neexistuje jednotný celosvětově obecný pohled na používání BCG vakcíny.

Vliv způsobu podání BCG vakcíny
Obecně byl přijat intradermální způsob podání BCG vakcíny jako nejvhodnější. Důvodem je skutečnost, že dávka může být dobře měřitelná a podávání může být kontrolované. Nejčastěji se aplikuje do deltoidní oblasti.
Vedle intradermální aplikace se může BCG podávat i subkutánně se stejným výsledkem protekce. Tento způsob však často vyvolává abscesy a nehezké jizvy [71]. Jinou technikou je skarifikace s použitím rozdvojené jehly, která však ne vždy zajistí spolehlivý výsledek imunizace [71-73]. Narozdíl od tradičních způsobů aplikace se minimalizuje vznik lokálních komplikací. Vícebodová technika byla vyvinuta ve 40letech minulého století [66-76] a dodnes se používá ve Spojených státech. Stejně tak se používala více než 40 let v Japonsku [77]. Její výhodou je nízká reaktogenita.


C) Perzistence
Některé studie naznačují, že protekce s BCG zprostředkovaná buněčnou imunitní odpovědí je dlouhotrvající. Dokonce se předpokládá [30], že 70-80% původní ochrany získané bezprostředně po BCG imunizaci přetrvává po dobu 10 let. V jedné studii [37] byla dokonce pozorována ještě 75% protektivní účinnost ve skupině osob po 23 letech po imunizaci, které byly očkovány ve věku 0-3 měsíce. Tyto údaje vedou k závěru, že další posilující dávka (booster) není nutná.
Doba po BCG očkování
Protektivní účinnost [30]
(The Medical Research Council Trial in the UK)
% zjištěná
% původní protekce
0
81
100
2,5
87
107
5
79
86
7,5
79
86
10-15
59
73

Literatura
1. Lune MB. Resistance to Tuberculosis: Experimental Studies in Native and Acquired Defensive Mechanisms. Cambridge, Harvard University Press, 1964.
2. Dannenberg AM Jr. Immune mechanisms in the pathogenesis of pulmonary tuberculosis. Rev Infect Dis ll(suppl 2):S369-S378, 1989.
3. Dannenberg AM Jr. Delayed-type hypersensitivity and cell-mediated immunity in the pathogenesis of tuberculosis. Immunol Today 12:228-236, 1991.
4. Orme IM. Characteristics and specificity of acquired immunologic memory to Mycobacterium tuberculosis. J Immunol 140:3589- 3593, 1988.
5. Grange JM. Vaccination against tuberculosis: Past problems and future hopes. Semin Respir Crit Care Med 18:459-470, 1997.
6. Orme IM, Flynn JL, Bloom BR. The role of CD8+ T cells in immunity to tuberculosis. Trends Microbiol 1:77-78, 1995.
7. Molloy A, Laochumroonvorapong P, Kaplan G. Apoptosis, but not necrosis, of infected monocytes is coupled with killing of intracellular bacillus Calmette-Gucrin. J Exp Med 180:1499-1509,1995.
8. Orme IM, Anderson P, Boom WH T cell response to Mycobacterium tuberculosis. J Infect Dis 167:1481-1497, 1993.
9. Mosmann TR. Regulation of immune response by T cells with different cytokine secretor phenotypes: Role of a new cytokine, cytokine synthesis inhibitory factor (IL-10). fnt Arch Allergy Appl Immunol 94:110-115, 1991.
10. Bretscher PA. A strategy to improve the efficacy of vaccination against tuberculosis and leprosy. Immunol Today 13:342-345, 1992.
11. Surcel HM, Troyer-Blomberg M, Paulie S, et al. Thl/Th2 profiles in tuberculosis based on proliferation and cytokine response of blood lymphocytes to mycobacterial antigens. Immunology 81:171-176, 1994.
12. Schauf V, Rom WN, Smith KA, et al. Cytokine gene activation and modified responsiveness to interleukin-2 in the blood of tuberculosis patients. J Infect Dis 168:1056-1059, 1993.
13. Rook GAW, Hernandez-Pando R. The pathogenesis of tuberculosis. Am Rev Microbiol 50:259-284, 1996.
14. Osborn TW. Changes in BCG strains. Tubercle 64:1-13, 1983.
15. Fine PEM, Sterne JAC, Ponnighaus JM, et al. Delayed type hypersensitivity, mycobacterial vaccines and protective immunity. Lancet 344:1245-1249, 1994.
16. al-Kassimi FA, al-Hajjaj MS, al-Orainey IO, et al. Does the protective effect of neonatal BCG correlate with vaccine-induced tuberculin reaction? Am J Respir Crit Care Med 152:1575-1578, 1995.
17. Grange JM. Environmental mycobacteria and BCG vaccination. Tubercle 67:1-4, 1986.
18. Pithie AD, Rahelu M, Kumararatne DS, et al. Generation of cytolytic T cells in individuals infected with Mycobacterium tuber­culosis and vaccinated with BCG. Thorax 47:695-701, 1992.
19. Fine PEM. Leprosy and tuberculosis: An epidemiological com­parison. Tubercle 65:137-153, 1984.
20. Smith DW, Harding GE. Are current strains of BCG protective in animals? Document TRI/SCG/79.6.1. Geneva: World Health Organization, 1979.
21. Heimbeck J. Sur la vaccination préventive de la tuberculose par injection sous-cutanée de BCG chez les él?ves infirmi?res de l'hôpital Ulleval ? Oslo (Norv?ge). Ann Inst Pasteur 1929;43:1229-1232.
22. Myint TT, Win H, Aye HI-I, et al. Case-control study on evaluation of BCG vaccination of newborn in Rangoon, Burma. Ann Trop Paediatr 1987;7:159-166.
23. Narain R, Krishnaswamy KV, Vallishayee RS, et al. Assessment of BCG vaccination in newborn babies. Indian J Med Res 1978;68:403-412.
24. Edwards LB, Palmer CE, Magnus K. BCG vaccination. WHO Monogr Ser 1953;12:125-141.
25. Tuberculosis Program, Public Health Service, USA. Bull WHO 1955;12:47-62.
26. Comstock GW. Vaccination against tuberculosis: controlled trials of BCG vaccination by the US Public Health Service, In: Proceedings Int Conf Application of Vaccines against Viral, Rickettsial and Bacterial Diseases of Man. PAHO Sci Publ 1971;226:378-381.
27. Hart PD' A, Sutherland I, Thomas J. The immunity conferred by effective BCG and vole bacillus vaccines in relation to individual variations in tuberculin sensitivity and to technical variations in the vaccines. Tubercle 1967;48:201-210.
28. Fine PEM, Rodrigues LC. Modern vaccines. Mycobacterial diseases. Lancet 1990;1:1016-1020.
29. Fine PEM, Ponnighaus JM, Maine NP. The relationship between delayed type hypersensitivity and protective immunity induced by mycobacterial vaccines in man. Symposium on the Immunology of Leprosy, Oslo, Norway. Lepr Rev 1986;57(Suppl2):275-283.
30. Fourth Report to the Medical Research Council by its Tuberculosis Vaccines Clinical Trials Committee. BCG and vole bacillus vaccines in the prevention of tuberculosis in adolescence and early adult life. Bull WHO 1972;46:371-385.
31. Tuberculosis Prevention Trial. Trial of BCG vaccines in south India for tuberculosis prevention: first report. Bull WHO 1979;57:819-827.
32. Smith PG. Retrospective assessment of the effectiveness of BCG vaccination against tuberculosis using the casecontrol method. Tubercle 1982;62:23-35.
33. Ten Dam HG. Contact studies on the effectiveness of BCG vaccination in children. In: Proc XXXV Work Conf Tub Resp Dis, Singapore, 1986. Tokyo: Prof Postgrad Service;1987:80-86.
34. Milstien JB, Gibson JJ. Quality control of BCG vaccines by the World Health Organization: a review of factors that may influence vaccine effectiveness and safety. Bull WHO 1989;68:93-108.
35. Romanus V Tuberculosis in bacillus Calmette-Guerin immunized and nonimmunized children in Sweden: a tenyear evaluation following cessation of general bacillus Calmette-Guerin immunization of the newborn in 1975. Pediatr Infect Dis J 1987;6:272-280.
36. Smith PG. Case-control studies of the efficacy of BCG against tuberculosis, In: Proc XXXV Work Conf Tub Resp Dis, Singapore, 1986. Tokyo: Prof Postgrad Service; 1987:73-79.
37. Rosenthal SR, Loewinsohn E, Graham ML, et al. BCG vaccination against tuberculosis in Chicago: a twenty year study statistically analyzed. Pediatrics 1961;28:622-641.
38. Nemir RL, Teichner A. Management of tuberculin reactions in children and adolescents previously vaccinated with BCG. Pedi-atr Infect Dis J 2:446-451, 1983.
39. Menzies R, Vissandjee B. Effect of bacille Calmette-Guerin vac­cination on tuberculin reactivity. Am Rev Respir Dis 145:621-625, 1992.
40. Lifschitz M. The value of the tuberculin skin test as a screening test for tuberculosis among BCG-vaccinated children. Pediatrics 36:624-627, 1965.
41. Horwitz O, Bunch-Christensen K. Correlation between tubercu­lin sensitivity after 2 months and 5 years among BCG-vaccinated subjects. Bull World Health Organ 47:49-58, 1972.
42. Comstock GW, Edwards LB, Nabangxang H. Tuberculin sensi­tivity eight to fifteen years after BCG vaccination. Am Rev Respir Dis 103:572-575, 1971.
43. Margus JH, Khassis Y. The tuberculin sensitivity in BCG vacci­nated infants and children in Israel. Acta Tuberc Pneumonol Scand 46:113-122, 1965.
44. Landi S, Ashley MJ, Grzybowsld S. Tuberculin sensitivity follow­ing the intradermal and multiple puncture methods of BCG vaccination. Can Med Assoc J 97:222-225, 1967.
45. Ashley MJ, Siebenmann CO. Tuberculin skin sensitivity follow­ing BCG vaccination with vaccines of high and low viable counts. Can Med Assoc J 97:1335-1338, 1967.
46. Kemp EB, Belshe RB, Hoft DF. Immune responses stimulated by percutaneous and intradermal bacille Calmette-Guerin. J In­fect Dis 174:113-119, 1996.
47. Joncas JH, Robitaille R, Gauthier T. Interpretation of the PPD skin test in BCG-vaccinated children. Can Med Assoc J ] 13:127-128, 1975.
48. Magnus K, Edwards LB. The effect of repeated tuberculin test­ing on post-vaccination allergy. Lancet 1:643-644, 1955.
49. Ildirim I, Hacimustafaoglu M, Ediz B. Correlation of tuberculin induration with the number of bacillus Calmette-Guerin vac­cines. Pediatr Infect Dis J 14:1060-1063, 199S.
50. Young TK, Mirdad S. Determinants of tuberculin sensitivity in a child population covered by mass BCG vaccination. Tuber Lung Dis 73:94-100, 1992.
51. Sepulveda RL, Heiba IM, Naverrete C, et al. Tuberculin reactiv­ity after newborn BCG immunization in mono- and dizygotic twins. Tuber Lung Dis 75:138-143, 1994.
52. Sepulveda RL, Heiba IM, King A, et al. Evaluation of tuberculin reactivity in BCG-immunized siblings. Am J Respir Crit Care Med 149:620-624, 1994.
53. Karalliede S, Katugha LP, Uragoda CG. The tuberculin response of Sri Lankan children after BCG vaccination at birth. Tubercle 68:33-38, 1987.
54. Smith D, Harding C, Chan J, ct al. Potency of 10 BCG vaccines organized by tire IABS. J Biol Stand 7:179-197, 1979.
55. Seknis VM, Freudenstein H, Sirks JL. Report on results of a collaborative assay of BCG vaccines organized by the Interna­tional Association of Biological Standardization. J Biol Stand 5:85-109, 1977.
56. Dubos RJ, Pierce CH. Differential characteristics in vitro and in vivo of several substrains of BCG. I. Multiplication and survival in vitro. Am Rev Tuberc 74:655-666, 1956.
57. Gheorghiu M, Lagrange PH. Viability, heat stability and immunogenicity of four BCG vaccines prepared from four different BCG strains. Ann Immunol 134C:124-I47, 1983.
58. Formukong NG, Dale JN, Osborn TW, et al. Use of gene probes based on the insertion sequence IS986 to differentiate between BCG vaccine strains. J Appl Bacteriol 72:126-133, 1992.
59. Comstock GW Identification of an effective vaccine against tuberculosis. Am Rev Respir Dis 138:479;180, 1988.
60. Tuberculosis Control Program and Expanded Program on Im­munization. Efficacy of infant BCG immunization. Wkly Epidemiol Rec 28:216-218, 1986.
61. Pollock TM. BCG vaccination in man. Tubercle 40:339-412, 1959.
62. Lehman HG, Englehardt H, Freudenstein H, et al. BCG vaccination of neonates, infants, school children and adolescents. II. Safety of vaccine with strain 1331 Copenhagen. Dev Biol Stand 43:133-136, 1979.
63. Expanded Program on ImmunizarJon/BioIogicals Unit. Lymphadenitis associated with BCG immunization. Wldy Epidemiol Rec 63:381-388, 1988.
64. Expanded Program on Immunization/Biologicals Unit. BCG-associated lymphadenitis in infants. Wkly Epidemiol Rec 30:231-232, 1989.
65. Kroger L, Bnmder p., Korppi M, et al. Osteitis after newborn vaccination with three different bacillus Calmette-Guerin vac­cines: Twenty-nine years of experience. Pediatr Infect Dis J 12:113-116, 1994.
66. Behr MA, Small PM. Declining efficacy of BCC strains over time? A new hypothesis for an old controversy [abstract]. Am j Respir Crit Care Med 155:A222, 1997.
67. Gheorghiu M. The stability and immunogenicity of a disperscd-grown freeze-dried Pasteur BCG vaccine. J Biol Stand 15:15-26, 1988.
68. Abou-Zeid C, Rook GAW, Mannikin DE, et al. Effect of the method of preparation of bacille Calmette-Guerin vaccine on the properties of four daughter strains. J Appl Bacteriol 63:449-453, 1987.
69. Devadoss PO, Klegerman ME, Groves MJ. A scanning electron microscope study of mycobacterial developmental stages in com­mercial BCG vaccines. Curr Microbiol 22:247-252, 1991.
70. Harboe M, Nagel S. MPB70, a unique antigen of Mycobacterium bmis BCG. Am Rev Respir Dis 129:444-452, 1984.
71. ten Dam HQ. Research on BCG vaccination. Adv Tuberc Res 21:79-106, 1984.
72. ten Dam HG, Fillastre C, Conge C, ctal. The use of jet injectors in BCG vaccination. Bull World Health Organ 43:707-720, 1970.
73. Darmanger AM, Nekzad SM, Kuis M, et al. BCG vaccination by bifurcated needle in a pilot BCG vaccination programme. Bull World Health Organ 55:49-61, 1977.
74. Birkhaug K. An experimental and clinical investigation of a per­cutaneous (Rosenthal) method of BCG vaccination. Nord Med 10:1224-1231, 1941.
75. Briggs IL, Smith C. BCG vaccination by the multiple puncture method in northern Rhodesia. Tubercle 38:107-111, 1957.
76. Griffith AH. BCG vaccination by multiple puncture. Lancet 1:1170-1172, 1959.
77. Gheorghiu M. The present and future role of BCG vaccine in tuberculosis control. Biologicals 18:135-141, 1990.
78. Rado TA, Bates JH. Mycobacteriophage structure and function: a review. Adv Tub Res (Karger: Basel) 1980;20:64-91.
79. Tripathy SP. Fifteen-year follow-up of the Indian BCG prevention trial. In: Proc XXXV Work Conf Tub Resp Dis, Singapore, 1986. Tokyo: Prof Postgrad Service; 1987:69-72.
80. Trnka L, Dankova D, Svandova E. Six years' experience with the discontinuation of BCG vaccine. 4. Protective effect of BCG against Mycobacterium avium-intracellulare complex. Tuber Lung Dis 75:348-352, 1994.
81. Romanus V, Svensson A, Hollander HO. The impact of changing BCG coverage on tuberculosis in Swedish children between 1969 and 1989. Tuber Lung Dis 73:150-161, 1992.

Kontraindikace
ZPĚT

- Děti s akutním horečnatým onemocněním nesmí být očkovány minimálně do 2 týdnů po úplném vyléčení.
- Dočasná kontraindikace je porodní hmotnost novorozenců nižší než 2500 g.
- Pozitivní tuberkulínová zkouška je kontraindikací.
- Známé těžké alergické reakce na alespoň jednu ze složek vakcíny jsou kontraindikací pro očkování BCG vakcínou.
- U pacientů s tuberkulózou, s buněčnou nebo kombinovanou imunodeficiencí, s chronickým onemocněním ledvin nebo jater, se zánětlivým kožním onemocněním, s generalizovanou formou kožního ekzému a dermatózy, hemoblastózou, u pacientů léčených kortikosteroidy a imunosupresivními léky je očkování BCG vakcínou kontraindikováno.
- Pokud po imunizaci dojde ke vzniku komplikací, pak imunizace další dávkou téže vakcíny je kontraindikována do té doby, dokud nejsou vyjasněny příčiny této komplikace.
- Dočasnou kontraindikací pro očkování živou BCG vakcínou je léčba nebo postexpoziční profylaxe imunoglobulíny, transfúze krve a podání plazmy, léčba kortikosteroidy a imunosupresivními léky, léčba isoniazidem (INH) po dobu 3 (až 5) měsíců.
- Dočasnou kontraindikací je také očkování jinými živými vakcínami nebo hyposensibilizace alergeny po dobu minimálně 4 týdnů.
- Těhotenství je kontraindikací pro očkování vůči tuberkulóze.


Upozornění
ZPĚT

Výjimečně existuje možnost vzniku anafylaktického šoku a je vždy nutné postupovat tak, aby tato možnost byla eliminována.
Před očkováním se doporučuje zhodnotit zdravotní stav očkovaného dítěte. Je-li třeba, očkování se odloží do té doby, dokud zdravotní stav očkovaného dítěte neumožní provést imunizaci.
Neúmyslná intravaskulární aplikace vakcíny může způsobit reakci podobnou anafylaktickému šoku. Podle stupně závažnosti se tato reakce terapeuticky zmírňuje podáváním katecholamínu i.v., vysokými dávkami kortikosteroidů, kyslíkem apod. Někdy se doporučuje po nesprávné technice podání BCG vakcíny poskytnout očkované osobě terapii INH (isoniazid) po dobu 6 týdnů. Isoniazid inhibuje pomnožení mykobakterií tuberkulózy, což snižuje účinnost očkování.
U imunodeficitních pacientů může BCG imunizace vést k rozvinutí tuberkulózy vyvolané atenuovanou mykobakterií BCG.
Dojde-li po očkování k otoku mízních uzlin, jejichž velikost dosahuje velikosti mandle, uplatňuje se tuberkulostatická léčba pomocí isoniazidu. Vzniknou-li abscesy na mízních uzlinách, obvykle se provádí chirurgický zákrok s léčbou isoniazidem.


Interakce
ZPĚT

BCG vakcínu lze podávat simultánně s jinými očkovacími látkami zejména v těch případech, kdy je to nevyhnutelné. Je třeba mít na paměti, že toto simultánní očkování nemusí vždy zajistit 100% ochranu vůči některé z očkovacích látek nebo vakcinačních složek, a proto se doporučuje další očkování provádět ve tříměsíčním intervalu po očkování proti tuberkulóze a to tehdy, je-li jizvička po očkování zhojena.
Vakcína nesmí být míchána s jinými léky nebo vakcínami v jedné injekční stříkačce.
Očkování BCG vakcínou interferuje s antituberkulotiky (zejména s INH). Léčba imunosupresivy potlačuje imunitní systém a aplikace BCG vakcíny se může stát pro pacienta nebezpečnou.


Těhotenství a laktace
ZPĚT

Vakcína BCG se nedoporučuje podávat během těhotenství. V době těhotenství se toto očkování nedoporučuje, neboť existuje teoretické riziko pro plod. V období laktace lze ženu očkovat, protože nebyl dosud pozorován vliv na kojené dítě.


Nežádoucí účinky
ZPĚT
Přehled nežádoucích účinků po očkování bez ohledu na použitý typ komerční vakcíny a charakter vakcíny. Tyto údaje jsou pouze orientační a mohou se pro konkrétní vakcínu lišit.
Typ reakce / Systém ČETNOST POPIS
Lokální reakce Velmi časté:
>= 10%
bolest v místě injekce, indurace v místě injekce, lokální léze, ulcerace
Léze se obvykle spontánně hojí a zanechává po sobě povrchovou jizvu 2-10 mm v průměru téměř u všech očkovaných osob.
Velmi vzácné:
< 0,01%
ulcerace nebo absces v místě očkování o velikosti >=10 mm u novorozenců, >=20 u školních dětí, keloidní jizvy
Celkové reakce Velmi vzácné:
< 0,01%
osteomyelitis a/nebo arthritis
U osob s vrozenou imunodeficiencí (zejména s postiženou buněčnou imunitou) ke generalizaci BCG infekce, kdy vakcinační mykobakterie se rozšíří do různých orgánů včetně kostí a kloubů.
Imunitní systém Časté:
>= 1% a < 10%
zvětšení regionálních lymfatických uzlin (< 1 cm), zvětšení axilárních lymfatických uzlin
Vzácné:
>= 0,01% a < 0,1%
lymfadenopatie
Velmi vzácné:
< 0,01%
zvětšení lymfatických uzlin (< 1 cm) - axilárních, supraklaviculárních nebo na levé straně krku, s možností jejich kolikvace a provalení, podkožní nebo nitrosvalové granulomy, generalizovaná BCG infekce

Doba použitelnosti a skladování
ZPĚT

Lyofilizovaná BCG vakcína má obvykle dobu použitelnosti 24 měsíců, je-li skladována v lednici v neporušeném obalu při teplotě od +2°C do +8°C. Po uplynutí doby použitelnosti uvedené na obalu se vakcína nesmí používat. Je-li vakcína rozpuštěna ve vhodném roztoku, měla by být spotřebována okamžitě nejdéle do 4 až 8 hodin (podle typu vakcíny), je-li skladována v lednici při teplotě od +2°C do +8°C. Pro vakcínu BCG vaccine SSI platí, že maximální doba použití po rekonstituci jsou 4 hodiny.
Rozpouštědlo se skladuje při lednicové teplotě od +2°C do +8°C a může mít dobu použitelnosti delší než je doba použitelnosti lyofilizované vakcíny. Vakcínu i rozpouštědlo je nutné chránit před světlem.