Vkacíny a Oćkování
AKTUALITA: Sledujte týdenní aktuality ze světa o možných zdravotních rizikových situacích.
PRŮVODCE
OČKOVÁNÍM
STŘEDISKA
OČKOVÁNÍ
CENY
VAKCÍN
ZDRAVOTNÍ
POJIŠŤOVNY
EXOTICKÉ
INFEKCE
OČKOVÁNÍ
do CIZINY
CESTOVNÍ
MEDICÍNA
Přečtěte si důležité informace
AKTUALITY
ODBORNÉ PUBLIKACE
PRINCIPY OČKOVÁNÍ
PRAVIDELNÉ OČKOVÁNÍ
DOPORUČENÉ OČKOVÁNÍ
OČKOVÁNÍ do CIZINY
OČKOVÁNÍ BUDOUCNOSTI
ZÁKONNÉ NORMY
PORADNA
NAPIŠTE NÁM
 
AKTUALITY ze SVĚTA
 
 
TOPlist
OČKOVÁNÍ proti spalničkám, příušnicím a zarděnkám
Určeno pro odbornou lékařskou veřejnost
AKTUALIZACE ze dne: 7.1.2008
OBSAH  
Epidemiologie   Účinnost očkování
Klinický obraz   Kontraindikace
Očkovací látky   Upozornění
Složení očkovacích látek   Interakce
Indikace   Těhotenství a laktace
Legislativa   Nežádoucí účinky
Dávkování a způsob podání   Doba použitelnosti a skladování
Promeškaný termín očkování    

Epidemiologie - ČR
ZPĚT

Spalničky
Spalničky jsou nebezpečné, život ohrožující virové infekční onemocnění. Přirozeným hostitelem viru spalniček je výhradně člověk. K přenosu nákazy dochází vzdušnou cestou, kapénkovým způsobem. Tato infekční choroba bývala příčinou četného úmrtí dětí.
V České republice je v současnosti výskyt spalniček hlášen jen do dvaceti případů ročně a to u dospělých nebo dospívajících dětí, kteří nebyli očkováni vůbec nebo jenom jednou dávkou. Do roku 1969, před zahájením celoplošného očkování proti spalničkám, bylo hlášeno více než 50.000 případů nemocných a 50 úmrtí ročně. Přestože je v České republice dosažen vysoký stupeň proočkovanosti populace (až 98%), je stále nutné dbát na to, aby také nově narozené děti byly řádně a včas očkovány.

Příušnice
Příušnice patří k běžným dětským nemocem způsobeným virem příušnic. Jedná se o akutní virový zánět slinných žláz (příušních, podčelistních a podjazykových), často komplikovaný podrážděním slinivky břišní a nehnisavým zánětem mozkomíšních blan.Onemocnění postihuje všechny vnímavé osoby, většinou děti. Snadno se přenáší z jedné osoby na druhou kapénkovým způsobem. Jediným přirozeným zdrojem nákazy je člověk.
V České republice se provádí celoplošné očkování od roku 1987 nejprve dvojsložkovou vakcínou proti spalničkám a příušnicím a od roku 1995 trojsložkovou vakcínou proti spalničkám, příušnicím a zarděnkám. Nemocnost příušnicemi klesla z průměrného počtu 4.000 případů před zavedením očkování na 900 případů ročně. Skutečnost, že se příušnice dosud vyskytují řádově v tisíci případů ročně, pramení z toho, že celoplošné očkování proti příušnicím se provádí teprve několik let a ne všichni lidé byli očkováni nebo tuto infekční chorobu prodělali.

Zarděnky
Zarděnky jsou virové onemocnění typické pro člověka. Tato infekce je běžná u dětí a šíří se kapénkovým přenosem. Nejčastěji se vyskytuje na jaře. Vrozenými zarděnkami mohou onemocnět pouze děti, jejichž matky prodělaly zarděnky během těhotenství a to zejména v prvních třech měsících. Pokud nastávající matka onemocní zarděnkami, v prvním měsíci těhotenství je riziko poškození plodu 50%, ve 2. měsíci 25%, ve 3. měsíci 10% a malé riziko hrozí i ve 4. měsíci. Nákaza těhotné ženy vede často ke spontánnímu potratu.
První celoplošné očkování proti zarděnkám bylo v Československu vyhlášeno v roce 1982. Zdálo se, že je vhodnější očkovat pouze dívky ve věku 11 až 12 let. Neočkovaní chlapci a dívky mladší 11 let představovali jakýsi přirozený rezervoár pro toto virové onemocnění, a tak počet nemocných chlapců vzrostl. Teprve v roce 1986 byl tento výběr očkovaných dětí změněn a bylo zahájeno celoplošné očkování všech dětí starších 2 let. Dnes je očkování prováděno trojsložkovou vakcínou obsahující očkovací látky proti spalničkám, příušnicím a zarděnkám.


Výskyt (Incidence) absolutního počtu případů této nákazy v České republice (od 1955 do 2007)

Klinický obraz
ZPĚT

Spalničky
Klinicky se nemoc projevuje jako horečnatý stav s vyrážkou. Po uplynutí deseti dnů od nákazy se u vnímavého pacienta objeví příznaky zánětu horních cest dýchacích, se silnou rýmou, kašlem a zánětem spojivek. Nakažený člověk má uplakaný výraz. Po 4 dnech trvání těchto příznaků dojde ke vzniku živě červené vyrážky, jejíž ložiska, zpravidla o průměru 3-5 mm, mohou záhy splývat ve větší červené plochy. Vyrážka se zcela charakteristicky šíří od obličeje přes horní část trupu a končetin na dolní část těla. Po více než 3 dnech trvání začne vyrážka ustupovat ve stejném směru jako začínala, to znamená, že nejdříve začne blednout obličej a posléze další části trupu a končetin. Po odeznění vyrážky se kůže začne drobně olupovat. K nejčastějším komplikacím patří zápal plic, zánět středního ucha nebo nosních dutin. Tyto komplikace jsou většinou vyvolány další přidruženou bakteriální infekcí. K nejtěžším, často život ohrožujícím komplikacím patří zápal plic nebo zánět mozku, vyvolané samotným virem spalniček. Třetina dětí se zánětem mozku na tuto komplikaci umírala. Další třetina bývala postižena trvalými těžkými následky v podobě obrny, postižení smyslů či intelektu. Také zánět slepého střeva probíhá u spalniček velmi prudce s rychlým protržením střeva, které vede k zánětu pobřišnice. Naštěstí tyto komplikace nebývaly časté a vyskytovaly se přibližně u jednoho dítěte z tisíce. Nejtěžší formy onemocnění jsou pozorovány u podvyživených dětí a i dnes spalničky bývají příčinou vysoké úmrtnosti dětí v rozvojových zemích.

Příušnice
Příušnice, jejichž doba inkubace je obvykle 14 až 23 dní, se projeví zpravidla horečkou a bolestivým zduřením příušních slinných žláz. Zpočátku bývá postižena jedna strana. Po 2-3 dnech zánět přechází na druhou stranu. U nekomplikovaného onemocnění všechny příznaky odezní zpravidla do týdne. Z komplikací přichází v úvahu podráždění slinivky břišní, které se projeví bolestmi břicha a zvracením. Velmi často je průběh komplikován bolestmi hlavy, které jsou průvodním znakem nehnisavého zánětu mozkomíšních blan. Obě komplikace jsou důvodem ke krátkodobému pobytu v nemocnici. Pokud onemocní starší chlapci nebo dospělí muži je nemoc často komplikovaná zánětem varlat, po kterém může dojít k dočasné sterilitě. V ostatních případech příušnice odezní bez následků.

Zarděnky
Zatímco získaná forma zarděnek probíhá většinou lehce, při onemocnění těhotné ženy může dojít k závažnému postižení plodu. Inkubační doba je 14 až 21 dní. Klinický obraz je různý, od snadno přehlédnutelných forem s prchavou vyrážkou až po vzácné, těžké formy onemocnění, které mohou být provázeny zánětem mozku. Onemocnění zpravidla provázejí bolesti kloubů, v těžších případech také zánět kloubů. Charakteristické je zduření uzlin v šíjní krajině a za ušima. Vyrážka je růžová, velikosti čočky a po odeznění se kůže nijak charakteristicky nešupí. Jak již bylo uvedeno, získaná forma zarděnek probíhá zpravidla lehce, bez následků, těžké formy jsou vzácností. Naopak forma vrozená je formou velmi obávanou, neboť s sebou nese velmi vážné důsledky pro narozené dítě. Nákaza v prvních měsících těhotenství může vést k infekci plodu a k jeho poškození. Obvykle bývají postiženy ty orgány, které se vyvíjí během prvních třech měsíců těhotenství (oko, ucho a srdce).


Očkovací látky
ZPĚT
Název komerční vakcíny
1)
2)
3)
4)
5)
Poznámka
ERVEVAX
SPC
PI
R
13.9.1996
(SPC+PI)
X
není k dispozici
M-M-R II
SPC
PI
MMR
5.3.2003(SPC);
31.3.2004(PI)
R
M-M-RVAXPRO
SPC
PI
MMR
5.5.2006
(SPC+PI)
R
MOPAVAC
SPC
PI
MM
3.11.1998
(SPC+PI)
R
MOVIVAC
SPC
PI
Mu
20.3.2002
(SPC+PI)
R
PAVIVAC
SPC
PI
Mo
18.5.2005
(SPC+PI)
R
PRIORIX
SPC
PI
MMR
18.10.2006
(SPC+PI)
R
PRIORIX-TETRA
SPC
PI
MMR-V
8.8.2007(PI)
R
PROQUAD
SPC
PI
MMR-V
6.4.2006
(SPC+PI)
R
TRIVIVAC
SPC
PI
MMR
21.9.2005(SPC);
15.8.2007(PI)
R
1) Souhrn údajů o přípravku (SPC)
2) Příbalová informace (PI)
3) Zkratka
4) Datum poslední reveze textu
5) X ... není již v ČR registrována, R ... vakcína registrována v ČR nebo EU; I ... individuální dovoz (v ČR není registrována); S ... specifický léčebný program (v ČR není registrována)

Složení očkovacích látek
ZPĚT

Spalničky
Nejčastěji používaným vakcinačním kmenem bývá kmen Schwarz, který je odvozen další atenuací z původního kmene Edmonston a Edmonston A. Z kmene Edmonston se dále vyvinuly další vakcinační kmeny jako je Edmonston B, Edmonston-Zagreb a Moraten. Ve většině vakcín se používá koncentrace spalničkového vakcinačního viru v koncentraci 1000 TCID50. Většina vakcinačním spalničkových virů je adaptována na kuřecích fibroblastech, některé jsou adaptována i na lidských diploidních buňkách (kmen Edmonston-Zagreb) nebo na primárních buňkách psích ledvin (Schwarz, Sevapharma).


Příušnice
Jeryl Lynn
Vakcinační virus Jeryl Lynn byl izolován z krku Jeryl Lynn Hillemana a byl atenuován pasážováním na embryonovaných slepičích vejcích a buněčné kultuře kuřecích fibroblastů [1]. V České republice se používá dále atenuovaný vakcinační kmen Jeryl Lynn, který vznikl z původního vakcinačního viru další adaptací na primárních buňkách psích ledvin. Dalším derivátem původního kmene Jeryl Lynn je RIT 4385. Původní vakcinační kmen Jeryl Lynn obsahuje 2 odlišné kmeny atenuovaných příušnicových virů (stabilní směs dvou virových subpopulací), jejichž význam není objasněn. Jeden se označuje jako JL5 a druhý jako JL2. Příušnicová vakcína RIT 4385 byla odvozena z dominantního kmene ve vakcíně Jeryl Lynn, tj. JL5.
Urabe Am9
Urabe Am9 byl vyvinut v Instutu Biken v Japonsku a izolát byl získán ze slin pacienta s příušnicemi. Tato vakcína se vyrábí nejen v Japonsku ale i v Evropě. Byl připraven buď v amnionu embryonovaných slepičích vajec nebo na buněčné kultuře kuřecích zárodků.
Leningrad-3
Byl vyvinut v bývalém Sovětském svazu pomnožením na buněčné kultuře z morčecích ledvin a dále byl pasážován na embryonální kultuře z japonských křepelek.
L-Zagreb
V Chorvatsku byl kmen Leningrad -3 dále atenuován adaptací na buněčné kultuře z kuřecích embryonálních fibroblastů.
Rubini
Rubini byl odvozen z příušnicového izolátu získaného z moči dítěte jménem Carlo Rubini ve Švýcarsku v roce 1974 [2,4]. Sekvenční nukleotidová analýza prokázala, že tento kmen je velmi blízký divokému kmeni izolovaného v Německu v letech 1987-1992 [3], stejně jako na tkáňové kultuře adaptovaný kmen Enders [2]. Byl vyvinut pasážováním na lidských diploidních buňkách, sériovým pasážováním na embryonovaných slepičích vejcích a následně adaptací na lidských diploidních buňkách MRC-5. Tento kmen bývá hodnocen jako významně slabší než ostatní, což může být důsledek velkého počtu pasáží (>30).

Vakcinační kmen
Celkový
počet pasáží
Koncentrace ve vakcíně
(log TCID50)
Jeryl Lynn (MMR-II) [7,8]
17
3,7(4,4)*
Jeryl Lynn (Trivivac)
23
3,7(4,6)*
Jeryl Lynn, RIT4385 (Priorix)
17 ?
3,7
Urabe Am9
19
3,7(4,6)*
Leningrad-3 [5]
25
L-Zagreb [5]
26
3,5-4,1
Rubini [6,7]
>30
3,7
*) Původní koncentrace


Zarděnky

V 60. letech se v USA používaly vakcinační zarděnkové viry s kmeny HPV-77 (adaptovaný na kachních zárodcích) [9], HPV-77 (adaptované na psích ledvinách) [10] a Cendehill (adatovaný na králičích ledvinách) [11]. Později byl v Evropě registrován kmen RA27/3 adaptovaný na lidských diploidních buňkách [12], který nahradil předešlé kmeny v USA. Tento kmen byl izolován z plodu infikovaného zarděnkami na počátku roku 1965 [13,14]. Kultivační tekutina z tkáně byla přímo pasážována na buňkách WI-38, na nichž pak byla ještě dále pasážována celkem 8 krát. Pro snížení patogenity bylo přidáno ještě dalších 10 pasáží [16]. Pro přípravu vakcíny se používá kmen z 25.-30. pasáže na lidských diploidních buňkách (WI-38 nebo MRC-5) [15]. Koncentrace vakcinačního zarděnkového viru ve vakcínách MMR dosahuje 1000 TCID50.

Literatura
1. Buynak EB, Hilleman MR. Live attenuated mumps virus vaccine. 1. Vaccine development. Proc Soc Exp Biol Med 123:768-775, 1966.
2. Yates PJ, Afzal MA, Minor I'D. Antigenic and generic variation of the HN protein of mumps virus strains, j Gen Virol 77:2491-2497, 19%.
3. Kiinkel U, Driesel G, Henning U, et al. Differentiation of vaccine and wild mumps viruses by polymerase chain reaction and nucleotide sequencing of the SH gene: Brief report. J Med Virol 45:121-126, 1995.
4. Cluck R, Hoskins JM, Wcgmann A, et al. Rubini, a new live attenuated mumps vaccine virus strain for human diploid cells. Dev Biol Stand 65:29-35, 1986.
5. M. Beck, R. Welsz-Malecek, M. Mesko-Prejac, V. Rodmant, M. Juzbasic, M. RajMnger-Miholic, M. Prislin-Musk,V. Dobrovsak-Sottrek, S. Smerdell and D. W, Steiner; Mumps vaccine L-Zagreb, prepared in chick fibroblasts. I. Production and field trials; Journal of Biological St.; (1989) 17, 85-90
6. Weekly epidemiological rekord; No. 45, 2001, 76, 345-356
7. Demicheli V, Jefferson T, Rivetti A, Price D; Vaccines for measles, mumps and rubella in children (Review); Cochrane Database Syst Rev. 2005
8. Plotkin SA, Orenstein WA, Vaccines (third edition), W.W.Saunders company, 1999
9. Hilleman MR, Buynak EV, Whitman JE, et al. Live attenuated rubella virus vaccines: Experiences with duck embryo cell preparations. Am J Dis Child 118:166-171, 1969.
10. Meyer HM, Parkman PD, Hobbins TE, et al. Attenuated rubella viruses: Laboratory and clinical characteristics. Am J Dis Child 118:155-165, 1969.
11. Prinzie A, Huygelen C, Gold J, et al. Experimental live attenuated rubella virus vaccine: Clinical evaluation of Cendehill strain. Am J Dis Child 118:172-177, 1969.
12. Plotkin SA, Farquhar JD, KatzM, Buscr E Attenuation of RA27/ 3 rubella virus in WI-38 human diploid cells. Am J Dis Child 118:178-185, 1969.
13. Plotkin SA. History of rubella and the recent history of cell culture. In Plotkin S, Fantini B (eds). Vaccinia, Vaccination, Vaccinology: Jenner, Pasteur, and Their Successors. Paris, Else-vier, 1996, pp 271-282.
14. Plotkin SA, Comfeld D, Ingalls TH. Studies of immunization with living rubella virus: Trials in children with a strain cultured from an aborted fetus. AmJ Dis Child 110:381-389, 1965.
15. Plotkin SA, Farquhar JD, Ogra PL. Immunologic properties of RA27/3 rubella virus vaccine. JAMA 225:585-590, 1973.
16. PlotHn SA, Farquhar J, Katz M, Ingalls TH. A new attenuated rubella virus growth in human fibroblasts: Evidence for reduced nasopharyngeal excretion. Am J Epidemiol 86:468-477, 1967.

Indikace
ZPĚT

- pro aktivní imunizaci dětí ve věku od 15 měsíců do 25 měsíců vůči spalničkám, příušnicím a zarděnkám.
- pro aktivní imunizaci dospělých osob: monovakcíny nebo vícesložkové vakcíny bez omezení a to tehdy, je-li známá nebo předpokládána nedostatečná imunita vůči některé z uvedených infekčních onemocnění
- pro očkování proti zarděnkám u dospělých žen, u nichž byla prokázána nedostatečná hladina protilátek vůči zarděnkám, a které se chystají založit rodinu
- pro postexpoziční profylaxi vůči spalničkám, která je provedena do 72 hodin po expozici


Legislativa
ZPĚT

VYHLÁŠKA (č. 537/2006) ze dne 29. listopadu 2006
o očkování proti infekčním nemocem

§ 5
Pravidelné očkování proti spalničkám, zarděnkám a příušnicím

(1) Základní očkování se provede živou očkovací látkou, a to nejdříve první den patnáctého měsíce po narození dítěte.

(2) Přeočkování se provede za 6 až 10 měsíců po provedeném základním očkování, v odůvodněných případech i později s tím, že horní věková hranice pro podání očkovací látky není omezena.


Dávkování a způsob podání
ZPĚT

Dávkování:
Jedna dávka MMR, MM, M a R vakcíny má objem 0,5 až 07 ml. Primární imunizace je prováděna jednou dávkou ve věku od 15 měsíců.
Boosterující (posilující) imunizaci tvoří rovněž jedna dávka podaná ve věku 21 až 25 měsíců, tj. za 6-10 měsíců. Očkování dětí starších 2 let a dospělých se provádí obvykle jednou nebo dvěma dávkami v intervalu 6 až 10 měsíců.

Některé očkovací látky zahraničních výrobců se podávají dětem ve věku 9 až 15 měsíců a pro dosažení dlouhodobé ochrany se provádí posilující očkování ve věku od 7 do 14 let v závislosti na typu vakcíny a vyhláškách místních státních autorit. Důležité je však druhou dávku nepodávat dříve než po 28 dnech po očkování první dávkou. Obvykle ve světě se druhá dávka vakcíny proti spalnničkám, příušnicím a/nebo zarděnkám považuje za posilující (booster) očkování.

Způsob podání:
- vakcína se před použitím rozpustí ve vhodném rozpouštědle
- po dokonalém rozpuštění vznikne čirý roztok bezbarvý nebo žlutooranžové až oranžovočervené barvy
- vakcinační dávka se podává subkutánně do anterolaterální oblasti stehna nebo horní končetiny
- vakcína se nesmí aplikovat nitrožilně
- živé atenuované viry se snadno inaktivují alkoholem a detergenty
- před očkováním se musí dezinfekční činidla z kůže v místě vpichu odstranit


Promeškaný termín očkování
ZPĚT

Provede-li se očkování o více než 5 dní dříve než je předepsaný věk dítě pro dané očkování, pak se doporučuje danou dávku opakovat v předepsaný věk dítěte (ACIP 2006). Provede-li se každá další dávka základního očkování dříve než je předepsaný minimální interval (tj. 2. a další dávka je podána o více než 4 dny dříve než je stanovený interval), pak se doporučuje tuto dávku opakovat, avšak ne dříve než předepsaný minimální interval, tj. po minimálně 4 týdnech od nesprávného termínu podávání opakované dávky a to z důvodu možné interference vakcinačního antigenu s imunitní odpovědi vakcíny podané v nesprávný termín. 4týdenní interval je považován za obecně dostatečný pro předejití takové interference. Opakovaná dávka je považována za odpovídající dávku v dané posloupnosti příslušného schématu očkování a další případná dávka se aplikuje v intervalu počítaném od doby podání této opakované dávky (ACIP 2006).
V případě, že dojde k promeškání termínu po maximálním intervalu podání další dávky vakcíny (dojde k situaci opožděnému termínu podání vakcíny) není jednoznačně ustanoveno, zda je nezbytně nutné provádět očkování od počátku či stačí opakovat předešlou dávku a nebo stačí podat jen tuto poslední dávku. Postup je dán zpravidla zvyklostí v té či dané zemi.

Přehled doporučených intervalů (ACIP 2006)
Interval mezi dvěma
po sobě jdoucími
dávkami
Minimální interval
Maximální interval*
MMR
1-2
4 týdny
3-5 let**
*) Maximální interval je třeba interpretovat jako období mezi dvěma dávkami, kdy existuje určitá (omezená) protekce očkované osoby a není-li překročen pak není nutné očkování opakovat od počátku případně opakovat poslední dávku.
**) Maximální interval záleží na zvyklostech a kušenostech v zemi, dke se očkování provádí, tento interval může být až 13 let; je rovněž ovlivněn požíváním daného typu vakcíny.

Účinnost očkování
ZPĚT

A) Protektivní meze
Spalničky
Volba sérologické zkoušky je velmi důležitá pro zhodnocení imunitní odpovědi po očkování. Mezi velmi citlivé metody patří jako plakově neutralizační zkouška (PN) tak ELISA narozdíl od hemaglutinačně inhibiční zkoušky [1].
I když ELISA patří mezi rychlé a levné metody ve srovnání s neutralizačním testem, může být méně specifická v závislosti na výrobci soupravy, laboratoři a voleném antigenu. Zpravidla se touto metodou měří všechny protilátky, tj. protilátky strukturálních i nestrukturálních virových antigenů. Navíc měření imunity získané po očkování u malých dětí má ještě jedno úskalí, tj. vliv mateřských protilátek. Ty zpravidla ELISA neumí oddělit ve svém měření na rozdíl od neutralizačního testu [2] a hemaglutinačně inhibičního testu, které na ně nejsou citlivé. Proto je metoda PN považována za nejvhodnější pro stanovení sérologické imunitní odpovědi u malých dětí po imunizaci.
Při vypuknutí spalniček v USA v roce 1985 bylo zjištěno, že ti studenti, kteří měli před expozicí hladiny protilátek nižší než 120 (200) mIU/ml, došlo u nich k rozvoji spalniček, zatímco studenti s hladinou vyšší než 120 (200) mIU/ml byly před spalničkami chráněni. Studie rovněž prokázala, že významně nižší hladiny neutralizačních protilátek byly zjištěny u těch, kteří zaznamenali nějaký symptom (např. horečku, bolest hlavy apod.) vzhledem k těm, kteří byli bez jakéhokoli příznaku [5].
Jako séroprotektivní mez hladin protilátek specifických vůči spalničkám byl stanoven virus neutralizační titr >= 1:8 [5,6,8]. V minulosti byl ještě jako sérokonverzní titr považován >=1:4 v případě použití méně citlivé
hemaglutinačně-inhibiční metody.
Výsledky stanovení PRN ("plaque reduction neutralisation test") lze vyjadřovat i v mezinárodních jednotkách na mezinárodní standard, tj. titru menší než 5 byla přiřazena hodnota protilátek 6,25 mIU/ml [9]. Minimální protektivní hladinu protilátek lze vyjádřit i pomocí mezinárodních jednotek standardu jako 120 (200) mIU/ml, což bylo ověřeno i na zvířecím modelu makaků [10].
Někdy bývá pro zjednodušení definovaná sérokonverze jako 4násobný nárůst protilátek stanovených metodou ELISA po očkování vzhledem k předimunizačnímu stavu.


Příušnice
Protekce vůči viru příušnic určuje jak buněčná tak humorální imunitní odpověď. Jednoduchý a asi nejúčinnější způsob této protekce je dán vazbou specifických neutralizačních protilátek na odpovídající patogen, které tyto protilátky jednoduše neutralizují. Přesto tyto protilátky mohou mimo jiné působit i opsonizací, aktivací komplementu a případně zprostředkovaně přes protilátkově závislou buněčnou cytotoxicitu.
Během imunizace dochází k primární imunitní odpovědi tvořené specifickými IgM protilátkami. Naopak podání druhé dávky příušnicové vakcíny vede k významnému nárůstu hladin IgG protilátek [11].
Ke stanovení imunitní odpovědi po očkování proti příušnicím se používají testy založené na redukci plaku, mikrotitrační neutralizaci, hemaglutinační inhibici a ELISA. Protilátkové titry měřené pomocí hemaglutinační inhibice případně ELISA metody jsou hodnocené jako nedostatečné ve výpovědní hodnotě ve srovnání s ostatními metodami. Metoda ELISA zpravidla poskytuje významně vyšší titry než jsou neutralizační titry, což lze snadno vysvětlit tím, že ELISA měří všechny protilátky, tj. nejen neutralizační [12,13]. Sérové protilátky bývají zpravidla po očkování významně nižší než je tomu po přirozené nákaze [14].
Kromě sérových neutralizačních IgG protilátek hrají v ochraně před příiušnicemi i svou roli slizniční IgA protilátky [15-17]. Rovněž se jedná o neutralizační protilátky a zdá se, že vzniká i jejich imunologická paměť [18].
Dominantním imunogenem pro vznik humorální imunitní odpovědi se ukazuje hemaglutinin-neuraminidáza [19,20], která nehraje jen roli ve virulenci příušnicového viru, ale i při indukci neutralizačních protilátek.


Protektivní hladina protilátek dosažené po očkování proti příušnicím byla definována jako titr vyšší nebo roven ředění 1:2 stanovený pomocí virus neutralizační techniky (např. PRN - plaque reduction neutralisation, která patří mezi tzv. "zlaté standardy") [22-26]. Významným doporučením při stanovování séroprotekce pomocí neutralizačního testu je používat minimálně laboratorní kmen nebo divoký kmen tak, aby bylo možné posoudit míru protekce ve vztahu k běžným životním podmínkám. Vakcinační kmen není pro toto stanovení vhodný. V některých publikací se jako sérokonverzní virus neutralizační titr považuje i 1:1.
Vedle této techniky, která patří mezi relativně obtížné a časově náročné metody, se v praxi používá pro klinické hodnocení i enzymové imunozkoušky (EIA), jako bývá nejčastěji ELISA, které jsou rychlé a snadné. Problémem však zůstává správná interpretovatelnost naměřených hodnot v kontextu se získanou imunitou vůči příušnicím. V případě jiných virových vakcín, jako např. vakcína proti spalničkám a zarděnkám, existují mezinárodní standardy, které se používají pro stanovení protektivních mezních titrů protilátek. Bohužel žádný obdobný standard pro příušnice neexistuje.
Příkladem selhání stanovení pomocí EIA (ELISA) byly relativně vysoké sérokonverze u osob očkovaných s příušnicovou vakcínou kmene Rubini, které i přes vysoké hladiny protilátek byly po expozici příušnicemi nakaženy a tyto protilátky je tedy neochránily [27-29].
I přes tyto znalosti někteří výrobci preferují stanovení sérokonverze příušnicové vakcíny pomocí metody ELISA. Pro minimalizaci příslušné chyby provádějí počáteční ředění séra v poměru 1:500, a jsou-li protilátky ještě stanovitelné, pak považují daného jedince za dostatečně chráněného, tj. splňuje podmínku sérokonverze [30]. Avšak taková stanovení mohou naopak vést k falešně negativním výsledkům.

Zarděnky
Očkování proti zarděnkám vyvolává jak humorální imunitní odpověď zprostředkovanou IgM i IgG tak buněčnou imunitní odpověď. Většina studií sledující imunogenitu tohoto očkování byla provedena měřením protilátek hemaglutinační inhibicí, přestože neutralizační odpověď by mohla být biologicky významnější. Vakcinační kmen RA27/3 vyvolává silnou imunitní odpověď do 21-28 dní po očkování u 95-100% očkovanců s titry v rozmezí od 1:30 do 1:300 v závislosti na titrační metodě [31-34].
Séroprotektivní mez hladin protilátek byla stanovena jako hemaglutinačně inhibiční titr >= 1:8 [35] nebo >= 16 IU/ml [36] při použití mezinárodního standardu.


B) Imunogenita a klinická účinnost
Spalničky
Bez ohledu na vakcinačním kmeni dosahuje imunizace s jednou dávkou vysoké séroprotekce v rozmezí 98-100% při minimálním protktivním titru protilátek >=1:8.

Mateřské protilátky a věk očkované osoby
Pasivně získané protilátky proti spalničkám, jako mateřské protilátky, mohou způsobit neutralizaci vakcinačního viru dříve než dojde k rozvoji imunitní odpovědi po očkování [37,38]. Kromě mateřských protilátek působí obdobně i imunoglobulíny a další krevní deriváty podané relativně krátce před očkováním.
Věk vhodný pro očkování proti spalničkám bývá v rozvojových zemích stanoven na nejnižší možnou úroveň, neboť zde je riziko expozice spalničkami vyšší než v průmyslově vyspělých zemích [37,39-69]. V době kdy bylo toto očkování zaváděno do pravidelného očkovacího schématu, byl určen věk 9 měsíců jako spodní limit pro toto očkování. Později se však ukázalo, že ještě mnoho dětí si uchovává relativně vysoké hladiny mateřských protilátek a to až do věku 11 měsíců [70-72]. To vedlo ke změně spodního limitu pro očkování proti spalničkám, který se posunul až k hranici 1 roku. Důkazem možného selhání tohoto očkování u dětí mladších 1 roku byla studie, ve které 123 dětí očkovaných ve věku 9 měsíců bylo séropozitivních jen z 86% zatímco z 899 dětí očkovaných ve věku 12 měsíců dosáhlo séropozitivity 97% [73]. Toto zjištění potvrdilo ještě mnoho dalších studií [74-78].

V roce 1976 byla spodní hranice pro toto očkování dále posunuta až do věku 15 měsíců [79,80], neboť novější data ukázala, že očkované děti starší 15 měsíců si vytvářejí pravděpodobně lepší imunitní odpověď [38]. I když jiné studie tento závěr vyvracely, přesto souhrnné výsledky vedly k závěru, že děti očkované ve věku 12 měsíců dosahují séropozitivity v 79-89% zatímco děti očkované v pozdějším věku >15 měsíců dosahují této séropozitivity v 87-99%. Vedle toho bylo však potvrzeno, že riziko spalniček je u dětí očkovaných ve věku 12 měsíců 1,5-5krát vyšší než v případě dětí očkovaných v pozdějším věku [38,75,81-87]. Proto od 90. letech minulého století bylo ustanoveno doporučení očkovat děti v rozmezí 12-15 měsíců.

Onemocnění a nesprávná výživa
Byly prováděné studie v rozvojových zemích, jejichž výsledky nebyly statisticky odlišné v sérokonverzi u nemocných a zdravých dětí očkovaných proti spalničkám. Naopak jedna studie v USA ukázala, že sérokonverze byla jen 80% u dětí s rhinorea, zatímco u zdravých dosáhla 98% [88]. Avšak jiné studie v USA a Kanadě obdobný rozdíl nepotvrdily u dětí s infektem horních cest dýchacích [89-91]. Thajská studie u dětí očkovaných v 9 měsících ukázala snížený průměrný geometrický titr protilátek v případě, že během 2 týdnů po očkování měly infekt horních cest dýchacích [92]. Rozdíl nebyl pozorován ani u dětí s dobrou či špatnou životosprávou [69,93,94].


Příušnice
Původní klinické studie provedené ve Spojených státech amerických prokázaly 95-96% účinnost očkování proti příušnicím se živou atenuovanou vakcínou (obsahující kmen Jeryl Lynn) v prevenci tohoto onemocnění a to ještě 20 měsíců po očkování [95-97]. První klinické studie v letech 1965-1967 u vybraných dětí jejichž sourozenci navštěvovali jesle nebo mateřské školy [95,97], se sérologicky sledovala přítomnost protilátek u očkovaných a neočkovaných dětí. Obě skupiny byly sledovány po dobu 20 měsíců, zda byly u nich laboratorně nebo klinicky prokázány příušnice. Z 867 dětí, které byly do studie zařazeny u 398 dětí (174 očkovaných a 228 neočkovaných - kontrolní skupina) byla dokumentována expozice příušnic během 20 měsíců po očkování. Pouze u 5 očkovaných dětí došlo k onemocnění příušnic, zatímco v kontrolní neočkované skupině bylo celkem 133 případů tohoto onemocnění. Protektivní klinická účinnost tohoto očkování byla stanovena na 95% (95 CI% 88-98%), přičemž se měnila v závislosti na charakteru expozice (rodinné prostředí, školní prostředí) nebo době expozice po očkování (0-10 měsíců po očkování vs. 11-20 měsíců po očkování).
Obdobný výsledek ukázala i další studie [96], do které bylo celek zařazeno více než 3000 dětí.


Kmen Rubini byl nejčastěji používán ve Švýcarsku v MMR vakcíně od roku 1986. V roce 1993 bylo ve Švýcarsku zaznamenán relativně vysoká incidence příušnic, minimálně 200 případů na 100.000 obyvatel. Od roku 1990 došlo k významnému postupnému nárůstu incidence příušnic z původních 0,7 případů za rok na jednoho ošetřujícího lékaře až na pětinásobek v roce 1993, tj. 3,3 případů. Mnoho studií provedených ve Švýcarsku vedlo k závěru, že používaná vakcína s kmenem Rubini selhala ve své účinnosti, která byla vyhodnocena jako 22% [98].
Kmen Urabe AM9 je tvořen směsí příušnicových virů, které se liší v jediném kodonu genu vyjadřujícím hemaglutinin-neuraminidázu (HN). Tento kmen je používán od 80. let minulého století v Japonsku i v některých evropských státech. Vakcína s tímto kmenem byla všeobecně hodnocena v řadě klinických studií jako nejúčinnější příušnicová vakcína s účinností vyšší než 75% [99]. Jiná studie ve Velké Británii [100] potvrdila více než 85% klinickou účinnost této vakcíny ještě 4 roky po její aplikaci.
Kmen Jeryl Lynn byl poprvé používán k očkování v USA v roce 1967. I když některé studie [99] ukázaly, že účinnost takové vakcíny může být jen 64,7%, po jejím zavedení došlo k významnému snížení výskytu příušnic. Jiná studie sledující přetrvávání účinnosti této vakcíny potvrdila ještě po 4 letech po očkování její 81% klinickou účinnost [100].
Většina studií srovnávající účinnost příušnicové vakcíny s kmenem Urabe nebo Jeryl Lynn ukazují o něco vyšší účinnost vakcíny obsahující kmen Urabe. Klinická účinnost vakcíny s kmenem Jeryl Lynn se pohybuje v rozmezí 81-90%, zatímco vakcíny s kmenem Urabe mezi 85-97% [100].


Imunogenita měřená pomocí virus-neutralizačního testu však ukazuje o něco nižší sérokonverzi než tomu odpovídá klinická účinnost stanovená zejména v době počátečního používání příušnicových vakcín. Sérokonverze po podání jediné dávky se pohybuje v rozmezí od 68-76% při hladinách specifických protilátek vyšších nebo rovných titru 1:2. Vzhledem k tomu, že se v posledních letech objevily epidemie příušnic i u původně očkovaných osob, lze předpokládat, že očkování s jednou dávkou nevyvolá u tak vysokého procenta očkovanců dostatečnou ochranu, jak se předpokládalo. Stávající epidemiologická situace vedla v řadě zemích k přehodnocení a zavedení do očkovacího schématu podání ještě druhé dávky proti příušnicím. Ze zkušenosti v České republice se ukazuje vhodné zavést toto druhé očkování relativně brzy po podání první dávky (např. v Rakousku se podává druhá dávka 1 měsíc po podání 1. dávky, v Německu 15-23 měsíců apod.).
České schéma očkování proti příušnicím bylo sestaveno v 80. letech, kdy se celosvětově doporučovalo očkovat pouze jedinou dávkou. Tehdy již Doc. Slonim poukázal právě na selhávání ochrany po očkování proti příušnicím u dětí očkovaných jednou dávkou a navrhl doočkovávat co nejdříve po očkování první dávkou, neboť česká příušnicová vakcína byla odvozena z původního kmene Jeryl Lynn další atenuací a obával se tehdy, že by vakcína mohla být i slabší. Srovnání všech tří dostupných vakcín obsahující kmen Jeryl Lynn ukazuje prakticky shodnou sérokonverzi i obdobný průměrný geometrický titr protilátek po očkování (data nelze statisticky vyhodnotit). Tyto výsledky korelují i s klinickou účinností stanovenou pro kmen Jeryl Lynn, která dosahuje 65-81% [99,100].

Vakcína
Sérokonverze
(pří titru >= 1:2)
Titrační kmen
Průměrný geometrický titr
MMR-II (1 dávka, n=85), [101]
75,6%
London 1
9,6
Trivivac (1 dávka, n=220) [102]
70,0%
Enders
4,0
Priorix (1 dávka, n=84) [101]
68,1%
London 1
7,9
Trivivac (2 dávky, n=61) [102]
100%
Enders
13,2

Zarděnky
Většina studií prokázala vysokou účinnost tohoto vakcinačního kmene, který zajišťuje 90-95% klinickou účinnost [103-108]. Tento kmen je hodnocen jako nejúčinnější ve srovnání s kmenem Cendehil, HPV-77 apod.
Vedle schopnosti vyvolat neutralizační protilátky je tato vakcína schopna vyvolávat i sekretorické IgA v nasofaryngu, což může být rovněž významné při tvorbě ochrany vůči zarděnkám [109,110]. Na druhou stranu existuje názor, že tyto IgA protilátky mají jen přechodný význam a nemusí hrát významnou roli při ochraně vůči zarděnkám [111]. Zarděnková vakcína vyvolává imunitní odpověď srovnatelnou s imunitou po přirozené infekci [112].

C) Perzistence
Spalničky
Několik prospektivních studií, které sledovaly přetrvávání protilátek po očkování proti spalničkám prokázalo jejich přítomnost u více než 85% očkovanců po 8-16 letech [113-115]. Po 8 letech po očkování nebyly HI protilátky detekovatelné u 12,9% očkovanců [115].
Podobné výsledky jsou pozorovány bez rozdílu vakcinačního kmene. U většiny očkovanců se vytvoří relativně vysoké hladiny protilátek. U těch, u nichž s postupem času jejich hladina klesá pod detekovatelnou mez, může dojít k reinfekci spalniček a virové replikaci. I když u většiny takovýchto osob vede reinfekce divokým virem jen k subklinickému posílení hladiny protilátek [114,116], byly pozorovány případy klinických spalniček u původně očkovaných osob [116-118]. Přesto toto sekundární selhání vakcíny vykazuje jen nízký stupeň: 2% čínská studie [116] a 5% kanadská studie [117].
Obdobné sekundární selhání vakcíny nebylo v řadě dalších studií potvrzeno, a proto se hledalo vysvětlení těchto případů. Předpokládá se, že s největší pravděpodobností u těchto očkovanců nedošlo ke vzniku dostatečně kvalitní imunitní odpovědi po primárním očkování. V jedné velké maďarské studii [119] a dvou menších studiích ve Spojených státech [120,121] bylo toto sekundární selhání pozorované zejména u dětí původně očkovaných ve věku nižším než 12 měsíců. Na základě dalších obdobných studií se ještě ukazuje, že dochází-li k dřívějšímu očkování tj. dětí ve věku mladším 12 měsíců (tj. ve 4 měsících a 9 měsících), nemusí k tomuto sekundárnímu selhání docházet, existuje-li možnost expozice divokým virem v období po očkování. U takovýchto dětí byla séropozitivita (>= 200 mIU/ml) ve více než 95% a to ještě po 36 měsících po očkování [124].
V případě, že dojde ke vzniku spalniček u osoby očkované v dětství, je jejich průběh mírnější než u neočkované osoby [120-123].


Příušnice
Sérologické přehledy ukazují, že neutralizační protilátky vyšší nebo rovny 1:2 přetrvávají po dobu minimálně 12 let po očkování [125-127]. Přesto bylo prokázáno, že tyto hladiny specifických protilátek po očkování proti příušnicím zůstávají nižší než jsou hladiny těchto protilátek po prodělání příušnic [128]. Průměrný titr specifických protilátek postupně klesá a snižuje se zhruba o 27% za 12 let po očkování, zatímco ten samý titr protilátek získaný po přirozené nákaze klesá za zhruba stejnou dobu o 80%. Po 12 letech je tedy průměrný titr protilátek 9,1 po očkování a 11,5 po přirozené infekci, tzn. oba titr jsou srovnatelné. Při sledování v době po očkování bylo prokázáno, že u očkovaných osob dochází a asymtomatickému posilování hladin protilátek díky subklinické přirozené infekci [126].
U kanadských dětí, které byly očkovány ve věku 12-24 měsíců s vakcínou obsahující kmen Jeryl Lynn nebo Urabe bylo v jejich 6-7 letech zjištěno, že u 15% očkovaných s kmenem Jeryl Lynn a u 7% očkovaných s kmenem Urabe došlo ke ztrátě sérokonverze (stanovené metodou ELISA) [129]. Obdobný výsledek byl pozorován u finských dětí očkovaných s vakcínou s kmenem Jeryl Lynn v 6 letech před podáním druhé dávky a v 9 letech po podání druhé dávky v 6 letech (ztráta zhruba 10% sérokonverze) [130].


Zarděnky
Byly provedené klinické studie sledující perzistenci protilátek po očkování proti zarděnkám. V jedné práci [131] bylo zjištěno, že ještě po 2 letech po očkování s vakcínou kmene RA27/3 bylo u všech původně 18 očkovaných osob zjištěna vysoká hladina protilátek. Podobný výsledek byl zjištěn i u amazonských indiánů [132], u nichž protilátky sice klesly asi 2,5krát, ale stále perzistovaly nad protektivní mezí. Taky u 98-99% žáků po 4 letech po očkování perzistovaly protilátky [133]. Nejdelší studie sledující perzistenci protilátek po očkování proti zarděnkám s kmenem RA27/3 byly prováděny 12-17 let po očkování [140], 15 let [134,136] a 10-21 let [135]. Výsledky těchto studií potvrzují přetrvávání vysokých hladin protilátek u více než 96% očkovaných dětí. Zpravidla jsou
však hladiny nižší než bezprostředně po primární imunizaci [137], tj. např. původní průměrný geometrický titr 1:110 klesne po 16 letech na 1:18.
Odlišný výsledek byl zjištěn ve studii u dětí očkovaných s vakcínou MMR ve věku 15 měsíců [138]. Tyto děti byly ještě ve 4-6 letech séropozitivní ve 100%, avšak v 11-13 letech si séropozitivitu udrželo jen 63% dětí. Tento výsledek jednoznačně prokázal ubývání imunity získané po očkování. Po podání druhé dávky si opět všech 100% dětí obnovilo původní séropozitivitu a průměrný titr neutralizačních protilátek specifických vůči zarděnkám se zvýšil trojnásobně.
Souhrnná studie sumarizující výsledky předchozích studií sledující perzistenci protilátek po očkování s různými vakcinačními kmeny ukázala, že protilátky perzistují v rozsahu 9-21 let po očkování jednou dávkou, přičemž 1% se stává seronegativních po očkování s kmenem RA27/3, 2,7% s kmenem Cendehill a 7,3% s HPV-77.
Přirozená imunita vůči zarděnkám přetrvává minimálně 26 let [139]. Podávání druhé dávky jako posilující se považuje za strategicky vhodné, i když výsledky studií napovídají, že ochrana po očkování proti zarděnkám je vysoce dlouhodobá, neboť se tím zajistí imunita vůči zarděnkám i v době fertilního věku žen.

Literatura:
1. Orenstein WA, Albrecht P, Herrmann KL, et al. The plaque neutralization test as a measure of prior exposure to measles virus. J Infect Dis 1987;155:146-148.
2. Sabin AB, Arechiga AF, de Castro FJ, et al. Successful immunization of infants with and without maternal
3. antibody by aerosolized measles vaccine II. Vaccine comparisons and evidence for multiple antibody response.
4. JAMA 1984;251:2363-2371.
5. S2000. Chen RT., Markowitz LE, Albrecht P at al. Measles antibody: reevaluation of protective titers. J.Infect.Dis. 1990, 162, 1036-1042
6. S28. Kiepiela P, Coovadia HM, Loening WE, Coward P, Abdool Karim SS, 1991. Loss of maternal measles antibody in black South
7. African infants in the first year of life-implications for age of vaccination. S Afr Med J 79: 145-148.
8. S29. Cutts FT, 1993. Module 7: Measles, The Immunological Basis for Immunization Series. Geneva: World Health Organization.
9. S2001. Milagritos D. Tapia,* Samba O. Sow, Sandra Medina-Moreno, Yu Lim, Marcela F. Pasetti, Karen Kotloff, And Myron M. Levine; A serosurvey to identify the window of vulnerability to wild-type measles among infants in rural Mali, Am. J. Trop. Med. Hyg., 73(1), 2005, pp. 26-31
10. Polack F, Lee SH, Permar S, et al. Successful DNA immunization against measles: neutralizing antibody against either the hemagglutinin or vision glycoprotein protects rhesus macaques without evidence of atypical measles. Nat Med 2000;6:776-81.
11. Pebody, R. G., Gay, N. J., Hesketh, L. M., Vyse, A., Morgan-Capner, P., Brown, D. W., Litton, P. & Miller, E. 2002, Vaccine 20, 1134-40.
12. Pipkin, P. A., Afzal, M. A., Heath, A. B. & Minor, P. D. 1999, J Virol Methods 79, 219-25.
13. Christenson, B. & Bottiger, M. 1990, Biologicals 18, 213-9.
14. Sugiura, A., Ohtawara, M., Hayami, M., Hisiyama, M., Shishido, A., Kawana, R., Hirayama, M., Makino, S., Kimura, M., Isomura, S., Takahashi, M., Kawakami, K. & Matsuyama, S. 1982, J Infect Dis 146, 709.
15. Friedman, M. G. 1981, J Infect Dis 143, 617.
16. Frankova, V. & Sixtova, E. 1987, Acta Virol 31, 357-64.
17. Tanaka, K., Baba, K., Okada, S., Okuno, Y., Yamanishi, K., Ueda, S., Takahashi, M. & Yamada, A. 1992, Vaccine 10, 824-7.
18. Cusi, M. G., Zurbriggen, R., Valassina, M., Bianchi, S., Durrer, P., Valensin, P. E., Donati, M. & Gluck, R. 2000, Virology 277, 111-8.
19. Wolinsky, J. S., Waxham, M. N. & Server, A. C. 1985, J Virol 53, 727-34.
20. Cusi, M. G., Fischer, S., Sedlmeier, R., Valassina, M., Valensin, P. E., Donati, M. & Neubert, W. J. 2001, Virus Res 74, 133-7.
21. Hilleman, M. R., R. E. Weibel, E. B. Buynak, J. Stokes, Jr., and J. E. Whitman, Jr. 1967. Live attenuated mumps-virus vaccine. IV. Protective efficacy as measured in a field evaluation. N. Engl. J. Med. 276:252-258.
22. Weibel, R. E., E. B. Buynak, J. Stokes, Jr., and M. R. Hilleman. 1970. Persistence of immunity four years following Jeryl Lynn strain live mumps virus vaccine. Pediatrics 45:821-826.
23. Weibel, R. E., E. B. Buynak, J. E. Whitman, Jr., M. B. Leagus, J. Stokes, Jr., and M. R. Hilleman. 1969. Jeryl Lynn strain live mumps virus vaccine. Durable immunity for three years following vaccination. JAMA 207:1667-1670.
24. Weibel, R. E., J. Stokes, Jr., E. B. Buynak, J. E. Whitman, Jr., and M. R. Hilleman. 1967. Live attenuated mumps-virus vaccine. 3. Clinical and serologic aspects in a field evaluation. N. Engl. J. Med. 276:245-251.
25. Buynak, E. B., J. E. Whitman, Jr., R. R. Roehm, D. H. Morton, G. P. Lampson, and M. R. Hilleman. 1967. Comparison of neutralization and hemagglutination-inhibition techniques for measuring mumps antibody. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 125:1068-1071.
26. Shehab, Z. M., P. A. Brunell, and E. Cobb. 1984. Epidemiological standardization of a test for susceptibility to mumps. J. Infect. Dis. 149:810-812.
27. Pons, C., T. Pelayo, I. Pachon, A. Galmes, L. Gonzalez, C. Sanchez, and F. Martinez. 2000 . Two outbreaks of mumps in children vaccinated with the Rubini strain in Spain indicate low vaccine efficacy. Euro. Surveill. 5:80-84.
28. Schlegel, M., J. J. Osterwalder, R. L. Galeazzi, and P. L. Vernazza. 1999 . Comparative efficacy of three mumps vaccines during disease outbreak in Eastern Switzerland: cohort study. BMJ 319:352.
29. Schlegel, M., and P. L. Vernazza. 1998 . Immune response and vaccine efficiency. Vaccine 16:1256.
30. Concepción Cruz Rojo, , a, d, Manuel Rodríguez Iglesiasb, Juana Olverac and Manuela Álvarez Girónd; Study of the immune response engendered by differents combined measles, mumps and rubella (MMR) vaccines in an area of Andalusia (Spain); Vaccine; Volume 22, Issue 2 , 12 December 2003, Pages 280-286
31. Plotkin SA, Farquhar JD, KatzM, Buscr E Attenuation of RA27/ 3 rubella virus in WI-38 human diploid cells. Am J Dis Child 118:178-185, 1969.
32. Plotkin SA, Farquhar J, Katz M, Ingalls TH. A new attenuated rubella virus growth in human fibroblasts: Evidence for reduced nasopharyngeal excretion. Am J Epidemiol 86:468
33. Hillary IB, Meenan PN, Griffiths AH, et al. Rubella vaccine trial in children. BMJ 2:531-532, 1969.
34. Berger R, Just M, Gluck R. Interference between strains in live virus vaccines I: Combined vaccination with measles, mumps ami rubella vaccine. J Biol Stand 16:269-273, 1988.
35. Palmer DF, Cavalalro JJ, Hermann KL, A procedural guide to the performance of rubella hemagglutination-inhibition test. Department of Health, Education and Welfare, Center for Disease Control. 1977, Atlanta, GA, USA
36. Cruz Rojo C, Rodriguez Iglesias M, Olvera J, Alvarez Giron M. Study of the immune response engendered by differents combined measles, mumps and rubella (MMR) vaccines in an area of Andalusia (Spain). Vaccine. 2003 Dec 12;22(2):280-6.
37. Black FL, Measles active and passive immunity in a worldwide perspective. Prog Med Virol 36:1-33, 1989.
38. Qrenstein WA, Markowitz L, Preblud SR, et al. Appropriate age for measles vaccination in the United States. Dcv Biol Stand 65:13-21, 1986.
39. Ratnam S, Cadag V, West R, ct al. Comparison of commercial enzyme immunoassay kits with plaque reduction neutralization test: for detection of measles virus antibody. J Clin Microbiol 33:811-815, 1995,
40. Helfand RF, Heath JL, Anderson LJ, et al. Diagnosis of measles with an IgM capture EIA: The optimal timing of specimen collection after rash onset, J Infect Dis 175:195-199, 1997.
41. Brown DW, Ramsay ME, Richards AF, Miller K. Salivary diag­nosis of measles: A study of notified cases in the United King­dom, 1991-1993. BMJ S308:1015-1017, 1994.
42. Langmuir AD. Medical importance of measles. Am J Dis Child 103:224-226, 1962,
43. Black FL. A nationwide screen survey of United States military recruits, 1962. TIL Measles and mumps antibodies. Am J Hyg 80:304-307, 1964.
44. Black FL, Measles antibody prevalence in diverse populations. Am J Dis Child 103:242-249, 1962.
45. James JJ, Halvorson GW. Mcasles-hke disease and measles anti­body titers in an adult population. MilitMed 144:672-676, 1979.
46. Preblud SR, Gross F, Ilalsey NA, et al. Assessment of suscepti­bility to measles and rubella, JAMA 247:113^1137, 1982.
47. dejong JG. The survival of measles virus in air, in relation to the epidemiology of measles. Arch Ges Virnsforsch 16:97-102, 1965.
48. Rilcy RC, Murphy G, Rilcy R-L. Airborne spread of measles in a suburban elementary school. Am J Epidemiol 107:421-432, 1978,
49. Bloch AB, Orenstein WA, Ewing VVM, et aL Measles outbreak in a pediatric practice: Airborne transmission in an office setting. Pediatrics 75:676-683, 1985,
50. Remington PL, Hall WN, Davis III, et al. Airborne transmission of measles in a physician's office. JAMA 253:1574-1577, 1985.
51. Top FH, Measles in Detroit, 1935. I. Factors influencing the secondary attack rate among susceptible^ at risk. Am I Public Health 28:935-943, 1938.
52. Hope-Simpson RE. Infectiousness of commnnicable diseases in the household. Lancet 2:549-554, 1952,
53. Sutter RW, Markowitz LE, Bennetch JM? ct ah Measles among the Amish: A comparative study of measles severity in primary and secondary cases in households, J Infect Dis 163:12-16, 1991.
54. Brandling-Bennett AD, Landrigan Pj, Baker EL. Failure of vac­cinated children to transmit measles. JAMA 224:616-618, 1973.
55. The National Vaccine Advisory Committee. The measles epi­demic. The problems, barriers, and recommendations. JAMA 266:1547-1552, 1991.
56. Hedrich AW. The corrected average attack rate from measles among city children. Am J Ilyg 11:576-600, 1930.
57. London WP, Yorke JA. Recurrent outhrcaks of measles, chick-cnpox and mumps. L Seasonal variation in contact rates. Am } Epidemiol 98:453-468, 1973.
58. Yorke JA> London WP. Recurrent outbreaks of measles, chick-enpox and mumps. II. Systematic differences in contact rates and stochastic effects. Am J Epidemiol 98:469-482, 1973.
59. Crawford GE, Gremillion DLL Epidemic measles and rubella in Air Force recruits: Impact of immunization, j Infect Dis 144:403^10, 1981.
60. Krause PJ, Cherry JD, Deseda-Tous J, et al. Epidemic measles in young adults: Clinical, epidemiologic, and serologic studies, Ann Intern Med 90:873-876, 1979.
61. Hcrsh BS, Markowitz LE, Hoffman RE, et ah A measles out­break at a college with a prematriculation immunization require­ment. Am J Public Health 81:360-364, 1991.
62. Chen RT, Goldbaum GM, Wassilak SGF? et aL An explosive point-source outbreak in a highly vaccinated population. Am J Epidemiol 129:173-182, 1989.
63. Centers for Disease Control and Prevention, Measles outbreak among school-aged children-Juneau, Alaska, 1996. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 45:777-780, 1996.
64. Centers for Disease Control and Prevention. Measles outbreak-southwestern Utah, 1996. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 46:766-769, 1997.
65. Griffith AH. Measles vaccination in tropical countries. Trans R Soc Trop Med Hyg 69:29-30, 1975.
66. Collaborative study by Ministry of Health of Kenya and World Health Organization. Measles immunity in the first year after birth and the optimum age for vaccination in Kenyan children. Bull World Health Organ 55:21-31, 1977.
67. Abdurrahman MB, Taqi AM, Measles immunity and immuniza­tion in developing countries of Africa: A review. Afr J Med Sci 10:57-62, 1981.
68. Ministries of Health of Brazil, Chile, Costa Rica, and Ecuador and the Pan American Health Organization, Seroconversion rates and measles antibody titers induced by measles vaccination in Latin American children 6 to 12 months of age. Rev Infect Dis 5:596-605, 1983.
69. Halsey NA. The optimal age for administering measles vaccine in developing countries. In Halsey NA, de Quadros CA (eds). Recent Advances in Immunization. A Bibliographic Review. Pub­lication 45 L Washington, DC, Pan American Health Organiza­tion, 1983, pp 4-17,
70. Albrecht P, Ron is FA, Saltern an FJ, Krugman S. Persistence of maternal antibody in infants beyond 12 months: Mechanism of measles vaccine failure. J Pediatr 91:715-718, 1977,
71. Krugnian RD? Rosenberg R, Mclntosh K, ct al Further attenu­ated live measles vaccine: The need for revised recommendations. J Pediatr 91:766-767, 1977.
72. Sato Hj Albrecht P, Reynolds DW, et al. 'Transfer of measles mumps and rubella antibodies from mother to infant. Its effect on measles, mumps and rubella immunization. Am I Dis Child 133:1240-1243, 1979.
73. Krugman S. Present status of measles and rubella immunization in the United Slates: A medical progress report. J Pedktr 78:1- 16, 1971.
74. Arbcter AM, Arthur JII, Bkkeimn GJ. Mclntosh K. Measles immunity: Reimniunization of children who previously received live measles vaccine and gamma globulin. J Pediatr 81:737-741, 1972.
75. Shasby DM, Shopc TC, Downs H, et al. Epidemic measles in a highly vaccinated population. N Engl J Med 296:585-589, 1977.
76. Nkowane BM, Bart SW, Orenstein WA, Baltier M. Measles outbreak in a vaccinated school population: Epidemiology? chains of transmission and the role of vaccine failures. Am J Public Health 77:434-438, 1987.
77. Mclntyrc RC, Preblud SR, Polloi A, Korean M. Measles and measles vaccine efficacy in a remote island population. Bull World Health Organ 60:767-775, 1982.
78. Davis RM, Whitman ED, Orenstein WA, et ah A persistent outbreak of measles despite appropriate prevention and control measures. Am J Kpidcmiol 126:438-449, 1987.
79. American Academy of Pediatrics- Measles immunization-new recommendations. News Release. October 217 1976-
80. Centers for Disease Control, Recommendations of the Public Health Service Advisory Committee on Immunization Practice. Measles vaccine. IWMWR Morb Mortal Wkly Rep 25:359-360, 365, 1976.
81. Marks JS, Halpin TJ, Orenstein WA, Measles vaccine efficacy in children previously vaccinated at 12 months of age. Pediatrics 62:955-960, 1978.
82. Centers for Disease Control. Measles-Florida, MMWR Morb Mortal Wkly Rep 29:625-628, 1980.
83. Judclsohn RG? Fleissner ML, O'Mara DJ. School-based measles outbreaks: Correlation of age at immunisation with risk of dis­ease. Am J Public Health 70:1162-1165, 1980.
84. Faust HS, Thompson FK Age at and time since vaccination during a measles outbreak in a rural community. Am J Dis Child 137:977-980, 1983,
85. Wassilak SGR Orenstein WA, Strickland PL, et aL Continuing measles transmission in students despite a school based outbreak control program. Am J Epidemiol 122:208-217, 1985.
86. Shelton JDj Jacobson JE? Orenstein WA, et al. Measles vaccine efficacy: Influence of age at vaccination vs duration of time since vaccination. Pediatrics 62:961-964, 1978.
87. Hull HF, Montcs JO, Hays PC, lucero RL. Risk factors for measles vaccine failure among immunized students. Pediatrics 76:518-523, 1985.
88. Krobcr MS, Straccncr CE, Bass J W, Decreased measles antibody response after measles-mumps-rubella vaccine in infants with colds JAMA 265:2095-2096, 1991.
89. Dennehy PH, Saracen CL7 Peter C, Seroconversion rates to combined measles-mumps-rubella-varicclla (MMRV) vaccine of children with upper respiratory tract infection. Pediatrics 94:514-516, 1994.
90. Ratman S, West R, Gadag V. Measles and rubella antibody response after measles-mumps-rubella vaccination in children with afebrile upper respiratory tract infection, J Pediatr 127:432-434, 1995.
91. King GEy Markomtz LE, Heath J, ct al. Antibody response to measles-mumps-rubclla vaccine of children with mild illness at the time of vaccination. JAMA 275:704-707, 1996.
92. Simasathien S, Migasena S, Bellini W, ct al. VIeasles vaccination of Thai infants by intranasal and subcutaneous routes: Possible interference from respiratory infections. Vaccine 15:329-334, 1997.
93. McMurray DN. Loomis AS, Cassazza LJ, Rev H. Influence of moderate malnutrition on morbidity and antibody response following vaccination with live, further attenuated measles virus vaccine. Bull Pan Am Health Organ 13:52-57, 1979,
94. Ifekwunigwe AE, Grasset N, Glass R3 Foster S. Immune response to measles and smallpox vaccinations in malnourished children. Am J Clin Nutr 33:621-624, 1980.
95. Hilleman MR, Buynak EB, Weibel RE, Stokes J Jr. Live attenuated mumps-virus vaccine. N Engl J Med 278:227-232, 1968.
96. Sugg WC, Finger JA, Levine RH, Pagano JS. Field evaluation of live virus mumps vaccine. J Pediatr 72:461-466, 1968.
97. Hillemiin MR, Weibcl RE, Buynak EB, ct al. Live, attenuated mumps-virus vaccine. 4. Protective efficacy as measured in a field evaluation. N Engl J Med 276:252-258, 1967.
98. Zimmermann et al. "Mumps epidemiology in Switzerland: results from the Sentinella surveillance system 1986-1993," Sozial- und Praventivmedzin, 1995, 40(2"): 80-92.
99. Toscani et al. "Comparison of the efficacy of various strains of mumps vaccine: a school survey," Sozial- und Praventivmedzin, 1996, 41(6): 341-7.
100. Miller et al. "Antibodies to measles, mumps, and rubella in UK children 4 years after vaccination with different MMR vaccines," Vaccine, 1995 13; (9): 799-802.
101. S. Stojanov, S. Thaler, D. Krah, S. Olsen, E. Harzer, S. Jow, J.G. Liese, B.H. Belohradsky; Evaluation of mumps neutralizing antibody in a double-blind comparative study of two live-attenuated measles-mumps-rubella vaccines; http://www.kenes.com/espid2001/ESPID_Abstracts/143.htm
102. Lesná I, Petráš M, Clincial Experience, MMR vaccine, TRIVIVAC, January 2003; unpublished data
103. Freestone DS, Reynolds GM, McKinnin JA, Prydie J. Vaccination of schoolgirls against rubella: Assessment of serological status and a comparative trial of Wistar RA 27/3 and Cendehill sttain live attenuated rubella vaccines in 13-year-old schoolgirls in Dudley. Br J Prev Soc Med 29:258-261, 1975.
104. Bottiger M, Heller L. Experiences from vaccination and revaeei-nation of teenage girls with three different rubella vaccines. J Biol Stand 4:107-114, 1976.
105. Grillner L. Neutralizing antibodies after rubella vaccination of newly delivered women. A comparison between three vaccines. Scand J Infect Dis 7:169-172, 1975.
106. MenserMA, Forrest JM, Bransby RD, Collins E. Rubella vaccination in Australia: Experience with the RA27/3 rubella vaccine and results of a double-blind trial in schoolgirls. Med J Aust 2:85-88, 1978.
107. BestJM, Banarvala JE, Bowen JM. New Japanese rubella vaccine: Comparative trials. BMJ 3:221-224, 1974.
108. Wang S, Han Y, Su W, et al. Studies on the reactogenicity and immunogenicity of the BRD-2 and RA27/3 live attenuated rubella vaccines. Vaccine 2:227-280, 1984.
109. Ogra PL, Kerr-Grant D, Umana G, et al. Antibody response in serum and nasopharynx after naturally acquired and vaccine-induced infection with rubella vims. N Engl J Med 285:1333-1339, 1971.
110. Cradock-Watson JE, MacDonald J, Ridehalgh MKS, et al. Nasal immunoglobulin responses in acute rubella determined by the immunofhiorescent technique. J Hyg (Camb) 71:603-616, 1973.
111. Cradock-Watson JE, MacDonald J, Ridehalgh MKS, et al. Specific immunoglobulin responses in serum and nasal secretions after the administration of attenuated mbella vaccine. J Hyg (Camb) 73:127-141, 1974.
112. Furesz J. Antibody response of school children to live attenuated rubella virus vaccines as measured with various serologic methods. Am J Epidemiol 95:536-541, 1972.
113. Dai B, Zhihui C, Qichang L, et al. Duration of immunity following immunization with live measles vaccine: 15 years of observation in Zhejiang Province, China. Bull WHO 1991;69:415-423.
114. Krugman S. Further attenuated measles vaccine: characteristics and use. Rev Infect Dis 1983;5:477-481.
115. Xiang J, Chen Z. Measles vaccine in the People's Republic of China. Rev Infect Dis 1983;5:506-510.
116. Zhuji measles vaccine study group. Epidemiologic examination of immunity period of measles vaccine (Chinese). Chin Med J 1987;67:19-22.
117. Mathias R, Meekison J, Arcan T, et al. The role of secondary vaccine failures in measles outbreaks. Am J Public Health 1989;79:475-478.
118. Reyes MA, Franky de Borrero M, Roa J, et al. Measles vaccine failure after documented seroconversion. Pediatr Infect Dis J 1987;6:848-851.
119. Nagy G, Kosa S, Takatsy S, et al. The use of IgM tests for analysis of the cause of vaccine failure: experience gained in an epidemic in Hungary in 1980 and 1981. J Med Virol 1984;13:93-103.
120. Cherry JF, Feigin RD, Lobes LA, et al. A clinical and serological study of 103 children with measles vaccine failure. J Pediatr 1973;82:802-808.
121. Smith FR, Curran AS, Raciti A, et al. Reported measles in persons immunologically primed by prior vaccination. J Pediatr 1982;101:391-393.
122. Aaby P, Bukh J, Leehoy J, et al. Vaccinated children get milder measles infection: a community study from Guinea-Bissau. J Infect Dis 1986;154:858-863.
123. Ueda S, Okuno Y, Sakamoto Y, et al. Studies on further attenuated live measles vaccine. VIII. Estimated duration of immunity after vaccination without natural infection. Biken J 1974;17:11-20.
124. Cutts FT, 1993. Module 7: Measles, The Immunological Basis for Immunization Series. Geneva: World Health Organization
125. Weibel RE, Buynak EB, McLean AA, Hilleman MR. Followup surveillance for antibody in human subjects following live attenuated measles, mumps and rubella virus vaccines. Proc Soc Exp Biol Med 162:328-332, 1979.
126. Weibel RE, Buynak EB, McLean AA, Hilleman MR. Persistence of antibody after administration of monovalent and combined live attenuated measles, mumps, and rubella virus vaccines. Pediatrics 61:5-11, 1978.
127. Weibel RE, Buynak EB, McLean AA, et al. Persistence of antibody in human subjects for 7 to 10 years following administration of combined live attenuated measles, mumps, and rubella virus vaccines. Proc Soc Exp Biol Med 165:260-263, 1980.
128. Weibel RE. Mumps vaccine. In Plotkin SA, Mortimer EA (cds). Vaccines. Philadelphia, WB Saunders, 1988 p 231.
129. Boulianne N, Dc Serres G, Ratinan S, et al. Measles, mumps, and rubella antibodies in children 5-6 years after immunization: Effect of vaccine type and age at vaccination. Vaccine 13:1611-1616, 1995.
130. Davidkin I, Valle M, Julkunen I. Persistence of anri-mumps virus antibodies after a two-dose MMR vaccination. A nine-year follow-up. Vaccine 13:1617-1622, 1995.
131. Liebhaber H, Ingalls TH, Le Bouvier GL, Horstmann DM. Vaccination with RA27/3 rubella vaccine. Am J Dis Child 123:133-136, 1972.
132. Black FL, Lamm SH, Emmons JE, Knheiro FP. Reactions to rubella vaccine and persistence of antibody in virgin-soil populations after vaccination and wild virus-induced immunization. J Infect Dis 133:393-398, 1976.
133. Balfour HH, Groth KE, Edelman CK. RA27/3 rubella vaccine. Am J Dis Child 134:350-353, 1980.
134. Hilary IB, Griffith AH. Persistence of rubella antibodies 15 years after subcutaneous administration of Wistar 27/3 strain live attenuated rubella virus vaccine. Vaccine 2:274-276, 1984.
135. O'Shea S, Best JM, Banatvala JE, et al. Rubella vaccination: Persistence of antibodies for 10-21 years [letter]. Lancet 2:909, 1988.
136. King JC, Lichenstein R, Fcigelman S, et al. Measles, mumps, and rubella antibodies in vaccinated Baltimote children. Am J Dis Child 147:558-550, 1993.
137. Christenson B, Bottiger M. Long-term follow-up study of rubella antibodies in naturally immune and vaccinated young adults. Vaccine 12:41-45, 1994.
138. Johnson C, Kumar M, Whitwell J, et al. Antibody persistence after Primary measles-mumps-rubella vaccine and response to a second dose given at four to six vs. eleven to thirteen years. Pediatr Infect Dis J 15:687-692, 1996.
139. Forrest JM, Slinn RF, Nowak MJ, Menser MA. Duration of immunity to rubella. Lancet 1:10-13, 1971.
140. Plotkin SA, Buser F. History of RA27/3 rubella vaccine. Rev Infect Dis 7:S77-S78, 1985.

Kontraindikace
ZPĚT

- děti s akutním horečnatým onemocněním nesmí být očkovány minimálně do 2 týdnů po úplném vyléčení
- známé těžké alergické reakce na alespoň jednu ze složek vakcíny jsou kontraindikací pro očkování MMR vakcínou
- pokud po imunizaci dojde ke vzniku komplikací, pak imunizace další dávkou téže vakcíny je kontraindikována do té doby, dokud nejsou vyjasněny příčiny této komplikace
- imunizace MMR vakcínou se nesmí provádět v případě, že předešlé podání vakcíny proti spalničkám, příušnicím a zarděnkám zapříčinilo přechodnou trombocytopenii nebo neurologické komplikace
- u osob s aktivní neléčenou TBC, u pacientů léčených ACTH, kostikosteroidy, zářením, alkylujícími činidly nebo antimetabolity, u pacientů s leukémií, lymfomy či jinými neopláziemi, postihující kostní dřeň či lymfatický systém a u pacientů s prokázanou závažnou poruchou imunity je očkování MMR kontraindikováno
- děti s progresivním neurologickým onemocněním by měly být vyloučeny z aktivní imunizace vůči spalničkám, příušnicím a zarděnkám
- dočasnou kontraindikací pro očkování živou MMR vakcínou je léčba nebo postexpoziční profylaxe imunoglobulíny, transfúze krve a podání plazmy po dobu 3 až 5 měsíců
- těhotenství je kontraindikací pro očkování vůči zarděnkám


Upozornění
ZPĚT

- výjimečně existuje možnost vzniku anafylaktického šoku
- před očkováním se doporučuje zhodnotit zdravotní stav očkovaného dítěte
- je-li třeba, očkování se odloží do té doby, dokud zdravotní stav očkovaného dítěte neumožní provést imunizaci
- prodělalo-li dítě některé z následujících nežádoucích účinků během prvních deseti dní po předešlém očkování touto vakcínou, vakcína smí být dále podávána jen po posouzení lékařem
- děti s epilepsií I. a II. stupně (kompenzovanou) mohou být očkovány trivakcínou se současným podáváním Diazepamu
- děti s epilepsií III. a IV. stupně jsou z tohoto očkování vyloučeny
- symptomaticky i asymptomaticky HIV pozitivní osoby se mohou očkovat proti spalničkám, příušnicím a zarděnkám, pokud nejsou těžce imunokompromitovaný
- očkovaná žena proti zarděnkám by neměla otěhotnět během prvních třech měsíců po tomto očkování, aby se předešlo případnému riziku pro její plod

Přenositelnost vakcinačního viru
Příušnice
V klinické předregistrační studii prováděné ve Filadelfii nedošlo u žádného z 365 dětí - sourozenců nebo spolužáků očkovaných dětí ke vzniku příušnic [1]. Tento závěr byl podpořen analýzou párových sér, které dokumentovaly absenci kontaktního přenosu vakcinačního viru. Další studie dokázaly, že očkovanci s kmenem Jeryl Lynn nešířily tento vakcinační virus mezi vnímavé osoby, neboť vakcinační virus nebyl izolován z krve, moči nebo slin [2,3]. Přesto však musí docházet k šíření viru v těle očkované osoby. To potvrdil Yamauchi, který izoloval vakcinační virus z placenty dvou séronegativních žen, které byly očkovány 7 a 10 dní před plánovaným porodem [2]. Jedna studie, která sledovala šíření vakcinačního viru kmene Urabe dokonce potvrdila přenos tohoto viru u dětí, u nichž došlo ke vzniku příušnic po očkování [4].


Zarděnky
I když počáteční studie prováděné s nižší detekční citlivostí předpovídaly, že zarděnkové vakcíny nezpůsobují virémii, byla tato virémie později dokumentována mezi 7-11. dnem po imunizaci [5]. Přesto bývá virémie mírná a nestálá. Vylučování viru z nosohltanu bývá častější a dochází k němu mezi 7-21. dnem po očkování. Titry vylučovaných virů nejsou vyšší než 10 PFU na jeden výtěr. Vylučování vakcinačního viru kulminuje kolem 11. dne po imunizaci [6,7].
byly rovněž prováděny studie sledující vliv vakcinačního viru na osoby vnímavé. Ukázalo se, že nebyl pozorován žádný jeho přenos na osoby žijící ve společné domácnosti s očkovanými osobami [8-10]. Více než 11.000 těhotných žen bylo hodnoceno ve virologické studii s novorozenci a potraty a nebyl demonstrován žádný vliv vakcinačního viru [11].

Literatura
1. Weibel RE, Stokes J, Buynak KB, et al. Live attenuatetl mumps virus vaccine. 3. Clinical and serologic aspects in a field evaluation. N Engl J Med 276:245-251, 1967.
2. Yamauchi T, Wilson C, St Geme JW. Transmission of live, attenuated mumps virus to the human placenta. N Engl J Med 290:710-712, 1974.
3. Stokes J Jr, Weibel RE, Buynak EB, Hilleman MR. Live attenuated mumps virus vaccine: II. Early clinical studies. Pediatrics 39:363-371, 1967.
4. Sawada H, Yano S, Oka Y, Togashi T. Transmission of Urabe Am 9 mumps vaccine between siblings [letter]. Lancet 342:371, 1993.
5. Balfour HH, Groth KE, Edelman CK, et al. Rubella viremia and antibody responses after rubella vaccination and reimmunization. Lancet 1:1078-1080, 1981.
6. Marshall WC, Peckham CS, Darby CP, ct al. Further studies with rubella vaccines in adults and children. Practitioner 207:632-638, 1971.
7. Detels R, Kim KSW, Gale JL, Grayston JT. Viral shedding in Chinese children following vaccination with HPV-77 and Cendehill-51 live attenuated rubella vaccines. Am J Epidemiol 94:473-478, 1971.
8. Prinzie A, Huygelen C, Gold J, et al. Experimental live attenuated rubella virus vaccine: Clinical evaluation of Cendehill strain. Am J Dis Child 118:172-177, 1969.
9. Plotkin SA, Farquhar JD, KatzM, Buscr E Attenuation of RA27/ 3 rubella virus in WI-38 human diploid cells. Am J Dis Child 118:178-185, 1969.
10. Perkins FT. Licensed vaccines. Rev Infect Dis 7:S73-S76, 1985.
11. Fleet WE, Vaughn WM, Lefkowitz LB, et al. Gestational exposure to rubella vaccinees: A population surveillance study. Am j Epidemiol 101:220-230, 1975.

Interakce
ZPĚT

Toto očkování by se němělo provádět:
- u dětí mladších 9 měsíců (kvůli možné interferenci mateřských protilátek s živými oslabenými viry, která účinnost očkování významně redukuje)
- u osob léčených kortikosteroidy nebo imunosupresivními látkami (z důvodu možného snížení imunitní odpovědi; jako imunosupresivní dávka steroidů je považována dávka užívána déle než 2 týdny v denní dávce >20 mg nebo >2 mg/kg prednisonu nebo jeho ekvivalentu, ACIP 2006)
- u osob kterým byl podán imunoglobulín, krev nebo krevní derivát (kvůli možné interferenci pasivně získaných protilátek se živými viry, které mohou být takto neutralizovány)
- u osob očkovaných jiným druhem vakcíny (z důvodu možného snížení účinnosti očkování), pokud to výrobce příslušné vakcíny nepovoluje
- u osob po bezprostředním provedení kožního tuberkulínového testu (živá spalničková vakcína přechodně potlačuje průkaznost kožní reakce)

Toto očkování se odkládá:
- u osob léčených kortikosteroidy nebo imunosupresivními látkami
na dobu minimálně 1 měsíce po ukončení léčby (nebo i dobu kratší v závislosti na dávce imunosupresivní látky a délce jejího užívání)
- u osob, kterým byl podán imunoglobulín, krev nebo krevní derivát,
na minimálně 3 měsíce
- u osob očkovaných jiným druhem vakcíny, na dobu minimálně 4 týdnů (doporučení)


Těhotenství a laktace
ZPĚT

- vakcína se nedoporučuje aplikovat během těhotenství a laktace
- dojde-li u očkovaných žen k otěhotnění během prvních 3 měsíců po očkování vůči zarděnkám, interupce není jednoznačně indikována a konečné rozhodnutí o případném přerušení těhotenství závisí na těhotné ženě a jejím lékaři


Nežádoucí účinky
ZPĚT

Přehled nežádoucích účinků po očkování bez ohledu na použitý typ komerční vakcíny a charakter vakcíny. Tyto údaje jsou pouze orientační a mohou se pro konkrétní vakcínu lišit.
U dospělých osob se nežádoucí účinky mohou vyskytovat častěji s výraznějšími projevy a s delší dobou trvání.
Po očkování příušnicovou vakcínou ke vzniku lehké meningitidy benigního charakteru (kmen Jeryl Lynn: 1 případ/1.500.000 dávek; kmen Urabe 1/60.000-100.000 dávek).

Typ reakce / Systém ČETNOST POPIS
Lokální
reakce
Časté:
>= 1% a < 10%
zarudnutí, bolest, zatvrdnutí a otok v místě vpichu, krátkodobé pocity pálení a/nebo píchání na místě vpichu
Celkové
reakce
Velmi časté:
>= 10%
zvýšená teplota; Horečka nebo zvýšená teplota se vyskytuje mezi 5. a 12. dnem po vakcinaci; u vakcíny Trivivac je četnost výskytu teploty uváděna vyšší než u jiných vakcín
Časté:
>= 1% a < 10%
vyrážka, horečka (nad 39°C)
Neobvyklé
(Méně časté):
>= 0,1% a < 1%
nervozita, únava, bolest hlavy, nechutenství, nauzea, průjmy, zvracení, faryngitida, bolest v krku, infekce horních dýchacích cest, rhinitida, bronchitida, kašel, virová onemocnění, zánět středního ucha, artralgie, myalgie; Artralgie a/nebo artritida se vyskytují častěji u dospělých žen; někdy tyto příznaky mohou být chronické.
Vzácné:
>= 0,01% a < 0,1%
retinitida, konjunktivitida, orchitida
Neurologické
reakce
Vzácné:
>= 0,01% a < 0,1%
febrilní křeče, afebrilní konvulze nebo záchvaty
Velmi vzácné:
< 0,01%
postvakcinační onemocnění meningitido